MÉTODOS DIAGNÓSTICOS PARA OS PATÓGENOS ALIMENTARES: CAMPYLOBACTER SP., SALMONELLA SP. E LISTERIA MONOCYTOGENES

Prevalência de Salmonella spp. em suínos abatidos em um frigorífico do Distrito Federal determinada pela técnica de PCR

Resumo A cadeia de produção suína vem crescendo assim como a exigência do fornecimento de produtos de qualidade, isentos de qualquer risco para os consumidores. A Salmonella spp. representa um risco biológico e é apontada como o agente responsável por diversos casos de doenças transmitidas por alimentos. O suíno é considerado um importante reservatório de Salmonella spp., o que torna imprescindível o conhecimento da dinâmica dessa bactéria em toda a cadeia de produção suína. Este trabalho foi realizado com o objetivo de determinar a prevalência de Salmonella spp. em suínos abatidos no Distrito Federal. Para isso, foram coletadas 240 amostras de linfonodos mesentéricos (LM) e 240 swabs de carcaça (SC) em um abatedouro com inspeção distrital. As amostras foram submetidas à PCR (Reação em Cadeia de Polimerase) para detecção da bactéria, revelando uma prevalência de 68,75% em LM de suínos abatidos e de 29,17% em SC suína. A análise dos dados obtidos demonstrou que a distância entre granja de origem e abatedouro apresentou correlação positiva moderada com a prevalência de Salmonella spp. em LM de suínos abatidos. Foi constatada, ainda, uma correlação positiva fraca entre a prevalência de Salmonella spp. em LM de suínos abatidos e a prevalência de Salmonella spp. em SC. Esses resultados apontam a necessidade da implantação de programas de controle para diminuir a prevalência nos animais destinados ao abate, bem como evitar a contaminação cruzada nos estabelecimentos manipuladores de alimentos.

Development of a multiplex qPCR in real time for quantification and differential diagnosis of Salmonella Gallinarum and Salmonella Pullorum

Currently there are 2659 Salmonella serovars. The host-specific biovars Salmonella Pullorum and Salmonella Gallinarum cause systemic infections in food-producing and wild birds. Fast diagnosis is crucial to control the dissemination in avian environments. The present work describes the development of a multiplex qPCR in real time using a low-cost DNA dye (SYBr Green) to identify and quantify these biovars. Primers were chosen based on genomic regions of difference (RoD) and optimized to control dimers. Primers pSGP detect both host-specific biovars but not other serovars and pSG and pSP differentiate biovars. Three amplicons showed different melting temperatures (Tm), allowing differentiation. The pSGP amplicon (97 bp) showed Tm of 78°C for both biovars. The pSG amplicon (273 bp) showed a Tm of 86.2°C for S. Gallinarum and pSP amplicon (260 bp) dissociated at 84.8°C for S. Pullorum identification. The multiplex qPCR in real time showed high sensitivity and was capable of quantifying 10⁸-10¹ CFU of these biovars.