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da Silva JG, Culuchi G, Pestana CP, da Silva Junior HC, Saraiva FB, Kugelmeier T, Rouede D, Pinto ACA, Pissinati T, D'Alincourt Assef AP, Rocha-de-Souza CM, E Oliveira TRT, Senna JPM. Staphylococcus nasal colonization in three species of non-human primates. Braz J Microbiol 2023:10.1007/s42770-023-00959-7. [PMID: 37016049 PMCID: PMC10072810 DOI: 10.1007/s42770-023-00959-7] [Citation(s) in RCA: 0] [Impact Index Per Article: 0] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Key Words] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 10/10/2022] [Accepted: 03/29/2023] [Indexed: 04/06/2023] Open
Abstract
Bacterial nasal colonization is common in many mammals and Staphylococcus represents the main pathogen isolated. Staphylococcus nasal carriage in humans constitutes a risk factor for Staphylococcus infections pointing out the need for animal experimentation for nasal colonization studies, especially for vaccine development. A limitation in addressing this hypothesis has been a lack of appropriate animal model. Murine models do not mimic human nasal colonization studies. Non-human primates (NHP) remain the best classical models for nasal colonization studies. In this study, we analyzed nasal colonization between two species of Old World monkeys (cynomolgus and rhesus) and a New World monkey (squirrel monkey) from breeding colony at Fiocruz (Brazil). Sixty male and female NHP with the average age of 1-21 years old, comprising twenty animals of each species, were analyzed. Nine different Staphylococcus species (S. aureus, S. cohnii, S. saprophyticus, S. haemolyticus, S. xylosus, S. warneri, S. nepalensis, S. simiae, and S. kloosi) were identified by MALDI-TOF and 16S rRNA gene sequence analyses. Antibiotic resistance was not detected among the isolated bacterial population. S. aureus was the main isolate (19 strains), present in all species, predominant in cynomolgus monkeys (9/20) and squirrel monkeys (7/20). spa typing was used to examine the clonal structure and genetic profile of Staphylococcus aureus isolates. Eight (8) spa types were identified among the S. aureus strains. A major cluster was identified, corresponding to a new spa type t20455, and no spa types found in this study were seen before in Brazil.
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Affiliation(s)
- Juliana Georg da Silva
- Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos-Bio-Manguinhos/Fiocruz, Avenida Brasil 4365, Pavilhão Rocha Lima, sala 412, Rio de Janeiro, RJ, CEP21040-900, Brazil
| | - Glenda Culuchi
- Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos-Bio-Manguinhos/Fiocruz, Avenida Brasil 4365, Pavilhão Rocha Lima, sala 412, Rio de Janeiro, RJ, CEP21040-900, Brazil
| | - Cristiane Pinheiro Pestana
- Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos-Bio-Manguinhos/Fiocruz, Avenida Brasil 4365, Pavilhão Rocha Lima, sala 412, Rio de Janeiro, RJ, CEP21040-900, Brazil
| | - Haroldo Cid da Silva Junior
- Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos-Bio-Manguinhos/Fiocruz, Avenida Brasil 4365, Pavilhão Rocha Lima, sala 412, Rio de Janeiro, RJ, CEP21040-900, Brazil
| | - Felipe Betoni Saraiva
- Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos-Bio-Manguinhos/Fiocruz, Avenida Brasil 4365, Pavilhão Rocha Lima, sala 412, Rio de Janeiro, RJ, CEP21040-900, Brazil
| | - Tatiana Kugelmeier
- Laboratório de Pesquisa em Infecção Hospitalar do Instituto Oswaldo Cruz (LAPIH/IOC/Fiocruz), Rio de Janeiro, Brazil
| | - Daniel Rouede
- Laboratório de Pesquisa em Infecção Hospitalar do Instituto Oswaldo Cruz (LAPIH/IOC/Fiocruz), Rio de Janeiro, Brazil
| | - Ana Cristina Araújo Pinto
- Laboratório de Pesquisa em Infecção Hospitalar do Instituto Oswaldo Cruz (LAPIH/IOC/Fiocruz), Rio de Janeiro, Brazil
| | - Thalita Pissinati
- Laboratório de Pesquisa em Infecção Hospitalar do Instituto Oswaldo Cruz (LAPIH/IOC/Fiocruz), Rio de Janeiro, Brazil
| | - Ana Paula D'Alincourt Assef
- Serviço de Criação de Primatas não Humanos do Instituto de Ciência e Tecnologia em Biomodelos (ICTB/Fiocruz), Rio de Janeiro, Brazil
| | - Claudio Marcos Rocha-de-Souza
- Serviço de Criação de Primatas não Humanos do Instituto de Ciência e Tecnologia em Biomodelos (ICTB/Fiocruz), Rio de Janeiro, Brazil
| | | | - José Procópio M Senna
- Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos-Bio-Manguinhos/Fiocruz, Avenida Brasil 4365, Pavilhão Rocha Lima, sala 412, Rio de Janeiro, RJ, CEP21040-900, Brazil.
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Gardinali NR, Marchevsky RS, Oliveira JM, Pelajo-Machado M, Kugelmeier T, Castro MP, Silva ACA, Pinto DP, Fonseca LB, Vilhena LS, Pereira HM, Lima SMB, Miranda EH, Trindade GF, Linhares JHR, Silva SA, Melgaço JG, Alves AMB, Moran J, Silva MCC, Soares-Bezerra RJ, Soriano A, Bentes GA, Bottino FO, Salvador Castro Faria SB, Nudelman RF, Lopes CAA, Perea JAS, Sarges K, Andrade MCR, Motta MCVA, Freire MS, Souza TML, Schmidt-Chanasit J, Pinto MA. Sofosbuvir shows a protective effect against vertical transmission of Zika virus and the associated congenital syndrome in rhesus monkeys. Antiviral Res 2020; 182:104859. [PMID: 32649965 DOI: 10.1016/j.antiviral.2020.104859] [Citation(s) in RCA: 6] [Impact Index Per Article: 1.5] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Key Words] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 03/22/2020] [Revised: 06/08/2020] [Accepted: 06/12/2020] [Indexed: 12/15/2022]
Abstract
The outbreaks of Zika virus (ZIKV) infection in Brazil, 2015-2016, were associated with severe congenital malformations. Our translational study aimed to test the efficacy of the antiviral agent sofosbuvir (SOF) against vertical transmission of ZIKV and the associated congenital syndrome (CZS), using a rhesus monkey model. Eight pregnant macaques were successfully infected during the organogenesis phase with a Brazilian ZIKV strain; five of them received SOF from two to fifteen days post-infection. Both groups of dams showed ZIKV-associated clinical signals, detectable ZIKV RNA in several specimens, specific anti-ZIKV IgM and IgG antibodies, and maternal neutralizing antibodies. However, malformations occurred only among non-treated dam offspring. Compared to non-treated animals, all SOF-treated dams had a shorter ZIKV viremia and four of five neonates had undetectable ZIKV RNA in blood and tissue samples. These results support further clinical evaluations aiming for the prevention of CZS.
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Affiliation(s)
- Noemi R Gardinali
- Laboratório de Desenvolvimento Tecnológico em Virologia, Instituto Oswaldo Cruz, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Renato S Marchevsky
- Laboratório de Neurovirulência, Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos Bio-Manguinhos, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Jaqueline M Oliveira
- Laboratório de Desenvolvimento Tecnológico em Virologia, Instituto Oswaldo Cruz, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Marcelo Pelajo-Machado
- Laboratório de Patologia, Instituto Oswaldo Cruz, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Tatiana Kugelmeier
- Instituto de Ciência e Tecnologia em Biomodelos, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil 4365, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Marcio P Castro
- Centro de Diagnóstico Veterinário (CEVET), Avenida Rui Barbosa 29, Niterói, RJ, Brazil
| | - Aline C A Silva
- Serviço de Equivalência e Farmacocinética (SEFAR), Vice-Presidência de Produção e Inovação em Saúde (VPPIS), Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Douglas P Pinto
- Serviço de Equivalência e Farmacocinética (SEFAR), Vice-Presidência de Produção e Inovação em Saúde (VPPIS), Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Lais B Fonseca
- Serviço de Equivalência e Farmacocinética (SEFAR), Vice-Presidência de Produção e Inovação em Saúde (VPPIS), Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Leandro S Vilhena
- Serviço de Equivalência e Farmacocinética (SEFAR), Vice-Presidência de Produção e Inovação em Saúde (VPPIS), Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Heliana M Pereira
- Serviço de Equivalência e Farmacocinética (SEFAR), Vice-Presidência de Produção e Inovação em Saúde (VPPIS), Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Sheila M B Lima
- Laboratório de Tecnologia Virológica, Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos Bio-Manguinhos, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Emily H Miranda
- Laboratório de Tecnologia Virológica, Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos Bio-Manguinhos, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Gisela F Trindade
- Laboratório de Tecnologia Virológica, Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos Bio-Manguinhos, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - José H R Linhares
- Laboratório de Tecnologia Virológica, Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos Bio-Manguinhos, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Stephanie A Silva
- Laboratório de Tecnologia Virológica, Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos Bio-Manguinhos, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Juliana Gil Melgaço
- Laboratório de Desenvolvimento Tecnológico em Virologia, Instituto Oswaldo Cruz, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Ada M B Alves
- Laboratório de Biotecnologia e Fisiologia de Infecções Virais, Instituto Oswaldo Cruz, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Julio Moran
- Dr. Julio Moran Laboratories, Vordergrüt 30, Herrliberg, Zurich, Switzerland
| | - Maria C C Silva
- Laboratório de Biologia Molecular de Patógenos, Centro de Ciências Naturais e Humanas, Universidade Federal Do ABC, Avenida Dos Estados, 5001, São Bernardo Do Campo, SP, Brazil
| | - Rômulo J Soares-Bezerra
- Laboratório de Desenvolvimento Tecnológico em Virologia, Instituto Oswaldo Cruz, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Andreza Soriano
- Laboratório de Desenvolvimento Tecnológico em Virologia, Instituto Oswaldo Cruz, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Gentil A Bentes
- Laboratório de Desenvolvimento Tecnológico em Virologia, Instituto Oswaldo Cruz, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Fernanda O Bottino
- Laboratório de Desenvolvimento Tecnológico em Virologia, Instituto Oswaldo Cruz, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Sarah Beatriz Salvador Castro Faria
- Laboratório de Desenvolvimento Tecnológico em Virologia, Instituto Oswaldo Cruz, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Rafael F Nudelman
- Instituto de Ciência e Tecnologia em Biomodelos, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil 4365, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Claudia A A Lopes
- Instituto de Ciência e Tecnologia em Biomodelos, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil 4365, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Javier A S Perea
- Instituto de Ciência e Tecnologia em Biomodelos, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil 4365, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Klena Sarges
- Instituto de Ciência e Tecnologia em Biomodelos, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil 4365, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Márcia C R Andrade
- Instituto de Ciência e Tecnologia em Biomodelos, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil 4365, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Márcia C V A Motta
- Laboratório de Tecnologia Virológica, Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos Bio-Manguinhos, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Marcos S Freire
- Laboratório de Tecnologia Virológica, Instituto de Tecnologia em Imunobiológicos Bio-Manguinhos, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Thiago M L Souza
- Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia de Gestão da Inovação em Doenças Negligenciadas (INCT/IDN), Centro de Desenvolvimento Tecnológico Em Saúde (CDTS), Fiocruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Jonas Schmidt-Chanasit
- WHO Collaborating Centre for Arbovirus and Haemorrhagic Fever Reference and Research, Bernhard Nocht Institute for Tropical Medicine, Bernhard-Nocht-Strasse 74, Hamburg, Germany
| | - Marcelo A Pinto
- Laboratório de Desenvolvimento Tecnológico em Virologia, Instituto Oswaldo Cruz, Fundação Oswaldo Cruz, Avenida Brasil, 4365, Rio de Janeiro, RJ, Brazil.
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Eleonora Madeira Buti T, Kugelmeier T, Sobral G, Viau Furtado P, do Valle Dutra de Andrade Neves D, Alvarenga de Oliveira C. Fecal glucocorticoid metabolites and assay validation: Stress response evaluation in captive brown howler monkeys (Alouatta clamitans). J Med Primatol 2018; 47:226-231. [PMID: 29693261 DOI: 10.1111/jmp.12345] [Citation(s) in RCA: 3] [Impact Index Per Article: 0.5] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Key Words] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Accepted: 03/10/2018] [Indexed: 11/30/2022]
Abstract
BACKGROUND The advent of non-invasive methods provides a powerful alternative to stress studies as the use of stressful handling techniques is no longer needed. However, many factors influence hormone metabolism such as sex, diet, and metabolic rate. Thus, validation should be species- and matrix-specific. METHODS To assess stress response in brown howler monkeys Alouatta clamitans, we adopted an ACTH challenge test and parallelism to provide physiological and laboratorial validation. Radioimmunoassay was used to measure fecal levels of corticosterone. RESULTS AND CONCLUSIONS All challenged animals presented a peak in fecal glucocorticoids levels the day after the treatment, while control animals did not. There were no significant sex differences, but females with infants had higher levels of corticosterone. Corticosterone levels showed parallelism to the standard curve of the diagnostics kit. Collectively, the data suggest that the method was validated and is useful for monitoring stress, thereby helping in conservation programs both in captivity and in the wild. Transit time information may be coupled with travel distance in seed dispersal studies.
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Affiliation(s)
| | - Tatiana Kugelmeier
- Centro de Criação de Animais de Laboratório (CECAL), Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ), Rio de Janeiro, RJ, Brazil
| | - Gisela Sobral
- Departamento de Reprodução Animal, Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia, Laboratório de Dosagens Hormonais, Universidade de São Paulo, São Paulo, SP, Brazil
| | - Priscila Viau Furtado
- Departamento de Reprodução Animal, Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia, Laboratório de Dosagens Hormonais, Universidade de São Paulo, São Paulo, SP, Brazil
| | - Dafne do Valle Dutra de Andrade Neves
- Departamento de Parques e Áreas Verdes (DEPAVE3), Divisão de Medicina Veterinária e Manejo da Fauna Silvestre, Secretaria do Verde e do Meio Ambiente, São Paulo, SP, Brazil
| | - Claudio Alvarenga de Oliveira
- Departamento de Reprodução Animal, Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia, Laboratório de Dosagens Hormonais, Universidade de São Paulo, São Paulo, SP, Brazil
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