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Moraes IDS, Silva VLDB, de Andrade-Silva BE, Gomes APN, de Urzedo NF, Abolis VB, Gonçalves RDS, Arpon KV, de Assis-Silva ZM, da Silva LF, Zago EA, Gonçalves MB, Braga ÍA, Saturnino KC, Colodel EM, Júnior AM, Pacheco RDC, Ramos DGDS. Gastrointestinal Helminths in Wild Felids in the Cerrado and Pantanal: Zoonotic Bioindicators in Important Brazilian Biomes. Animals (Basel) 2024; 14:1622. [PMID: 38891670 PMCID: PMC11171020 DOI: 10.3390/ani14111622] [Citation(s) in RCA: 0] [Impact Index Per Article: 0] [Reference Citation Analysis] [Abstract] [Key Words] [Grants] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 05/01/2024] [Revised: 05/26/2024] [Accepted: 05/28/2024] [Indexed: 06/21/2024] Open
Abstract
Environmental changes in the Brazilian Pantanal and Cerrado facilitate the spread of parasitic diseases in wildlife, with significant implications for public health owing to their zoonotic potential. This study aimed to examine the occurrence and diversity of gastrointestinal parasites in wild felids within these regions to assess their ecological and health impacts. We collected and analyzed helminth-positive samples from 27 wild felids using specific taxonomic keys. Diverse parasitic taxa were detected, including zoonotic helminths, such as Ancylostoma braziliense, Ancylostoma caninum, Ancylostoma pluridentatum, Toxocara cati, Toxocara canis, Dipylidium caninum, Taenia spp., Echinococcus spp., and Spirometra spp. Other nematodes, such as Physaloptera praeputialis and Physaloptera anomala, were identified, along with acanthocephalans from the genus Oncicola and a trematode, Neodiplostomum spp. (potentially the first record of this parasite in wild felids in the Americas). Human encroachment into natural habitats has profound effects on wild populations, influencing parasitic infection rates and patterns. This study underscores the importance of continuous monitoring and research on parasitic infections as a means of safeguarding both wildlife and human populations and highlights the role of wild felids as bioindicators of environmental health.
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Affiliation(s)
- Iago de Sá Moraes
- Laboratório de Parasitologia e Análises Clínicas Veterinária, Instituto de Ciências Agrárias, Universidade Federal de Jataí, Jataí 75801-615, GO, Brazil; (I.d.S.M.); (N.F.d.U.); (V.B.A.); (Z.M.d.A.-S.); (L.F.d.S.); (Í.A.B.)
| | - Victória Luiza de Barros Silva
- Laboratório de Parasitologia Veterinária e Doenças Parasitárias dos Animais Domésticos e Silvestres, Faculdade de Medicina Veterinária, Universidade Federal de Mato Grosso, Cuiabá 78060-900, MT, Brazil; (V.L.d.B.S.); (E.A.Z.); (M.B.G.); (R.d.C.P.)
| | - Beatriz Elise de Andrade-Silva
- Laboratório de Biologia e Parasitologia de Mamíferos Reservatórios, Instituto Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro 21040-360, RJ, Brazil; (B.E.d.A.-S.); (A.P.N.G.); (R.d.S.G.); (K.V.A.); (A.M.J.)
| | - Ana Paula Nascimento Gomes
- Laboratório de Biologia e Parasitologia de Mamíferos Reservatórios, Instituto Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro 21040-360, RJ, Brazil; (B.E.d.A.-S.); (A.P.N.G.); (R.d.S.G.); (K.V.A.); (A.M.J.)
| | - Nicoly Ferreira de Urzedo
- Laboratório de Parasitologia e Análises Clínicas Veterinária, Instituto de Ciências Agrárias, Universidade Federal de Jataí, Jataí 75801-615, GO, Brazil; (I.d.S.M.); (N.F.d.U.); (V.B.A.); (Z.M.d.A.-S.); (L.F.d.S.); (Í.A.B.)
| | - Vitória Breda Abolis
- Laboratório de Parasitologia e Análises Clínicas Veterinária, Instituto de Ciências Agrárias, Universidade Federal de Jataí, Jataí 75801-615, GO, Brazil; (I.d.S.M.); (N.F.d.U.); (V.B.A.); (Z.M.d.A.-S.); (L.F.d.S.); (Í.A.B.)
| | - Renata de Souza Gonçalves
- Laboratório de Biologia e Parasitologia de Mamíferos Reservatórios, Instituto Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro 21040-360, RJ, Brazil; (B.E.d.A.-S.); (A.P.N.G.); (R.d.S.G.); (K.V.A.); (A.M.J.)
| | - Karina Varella Arpon
- Laboratório de Biologia e Parasitologia de Mamíferos Reservatórios, Instituto Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro 21040-360, RJ, Brazil; (B.E.d.A.-S.); (A.P.N.G.); (R.d.S.G.); (K.V.A.); (A.M.J.)
| | - Zara Mariana de Assis-Silva
- Laboratório de Parasitologia e Análises Clínicas Veterinária, Instituto de Ciências Agrárias, Universidade Federal de Jataí, Jataí 75801-615, GO, Brazil; (I.d.S.M.); (N.F.d.U.); (V.B.A.); (Z.M.d.A.-S.); (L.F.d.S.); (Í.A.B.)
| | - Lizandra Fernandes da Silva
- Laboratório de Parasitologia e Análises Clínicas Veterinária, Instituto de Ciências Agrárias, Universidade Federal de Jataí, Jataí 75801-615, GO, Brazil; (I.d.S.M.); (N.F.d.U.); (V.B.A.); (Z.M.d.A.-S.); (L.F.d.S.); (Í.A.B.)
| | - Ellen Amanda Zago
- Laboratório de Parasitologia Veterinária e Doenças Parasitárias dos Animais Domésticos e Silvestres, Faculdade de Medicina Veterinária, Universidade Federal de Mato Grosso, Cuiabá 78060-900, MT, Brazil; (V.L.d.B.S.); (E.A.Z.); (M.B.G.); (R.d.C.P.)
| | - Michelle Benevides Gonçalves
- Laboratório de Parasitologia Veterinária e Doenças Parasitárias dos Animais Domésticos e Silvestres, Faculdade de Medicina Veterinária, Universidade Federal de Mato Grosso, Cuiabá 78060-900, MT, Brazil; (V.L.d.B.S.); (E.A.Z.); (M.B.G.); (R.d.C.P.)
| | - Ísis Assis Braga
- Laboratório de Parasitologia e Análises Clínicas Veterinária, Instituto de Ciências Agrárias, Universidade Federal de Jataí, Jataí 75801-615, GO, Brazil; (I.d.S.M.); (N.F.d.U.); (V.B.A.); (Z.M.d.A.-S.); (L.F.d.S.); (Í.A.B.)
| | - Klaus Casaro Saturnino
- Laboratório de Anatomia Patológica Veterinária, Instituto de Ciências Agrárias, Universidade Federal de Jataí, Jataí 75801-615, GO, Brazil;
| | - Edson Moleta Colodel
- Laboratório de Patologia Veterinária, Faculdade de Medicina Veterinária, Universidade Federal de Mato Grosso, Cuiabá 78060-900, MT, Brazil;
| | - Arnaldo Maldonado Júnior
- Laboratório de Biologia e Parasitologia de Mamíferos Reservatórios, Instituto Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro 21040-360, RJ, Brazil; (B.E.d.A.-S.); (A.P.N.G.); (R.d.S.G.); (K.V.A.); (A.M.J.)
| | - Richard de Campos Pacheco
- Laboratório de Parasitologia Veterinária e Doenças Parasitárias dos Animais Domésticos e Silvestres, Faculdade de Medicina Veterinária, Universidade Federal de Mato Grosso, Cuiabá 78060-900, MT, Brazil; (V.L.d.B.S.); (E.A.Z.); (M.B.G.); (R.d.C.P.)
| | - Dirceu Guilherme de Souza Ramos
- Laboratório de Parasitologia e Análises Clínicas Veterinária, Instituto de Ciências Agrárias, Universidade Federal de Jataí, Jataí 75801-615, GO, Brazil; (I.d.S.M.); (N.F.d.U.); (V.B.A.); (Z.M.d.A.-S.); (L.F.d.S.); (Í.A.B.)
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Stocker T, Ward MP, Šlapeta J. Nationwide USA re-analysis of amplicon metabarcoding targeting β-tubulin isoform-1 reveals absence of benzimidazole resistant SNPs in Ancylostoma braziliense, Ancylostoma tubaeforme and Uncinaria stenocephala. Vet Parasitol 2024; 327:110118. [PMID: 38278035 DOI: 10.1016/j.vetpar.2024.110118] [Citation(s) in RCA: 0] [Impact Index Per Article: 0] [Reference Citation Analysis] [Abstract] [Key Words] [MESH Headings] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 11/08/2023] [Revised: 01/13/2024] [Accepted: 01/14/2024] [Indexed: 01/28/2024]
Abstract
Nationwide sampling by Venkatesan and colleagues (2023) described the resistance status of the canine hookworm, Ancylostoma caninum, to benzimidazoles across the USA via β-tubulin isotype-1 amplicon metabarcoding. In this study, we aimed to use the existing public amplicon metabarcoding data and mine it for the presence of β-tubulin isotype-1 sequences that belong to hookworm species other than A. caninum. Through bioinformatics analysis we assigned species to A. caninum, Ancylostoma braziliense, Ancylostoma tubaeforme and Uncinaria stenocephala. All non-A. caninum sequences contained only the benzimidazole susceptible residues of β-tubulin isotype-1. Using two β-tubulin isotype-1 metabarcoding sequence data (assay targeting 134 and 167 codons, and assay targeting 198 and 200 codons), 2.0% (6/307) and 2.9% (9/310) individual samples had hookworms other than A. caninum (A. braziliense n = 5, A. tubaeforme n = 4 and U. stenocephala n = 2), respectively. We identified one sample containing A. braziliense in each of the Northeastern region and Midwestern region, and in three samples from the Southern region. Presence of A. tubaeforme in dog faeces is considered as pseudoparasitism. There were no statistically significant regional differences for the distribution of each species, for either of the two assays independently or combined (χ2 tests, P > 0.05). Our work demonstrates the utility of the amplicon metabarcoding for the identification of species through antemortem assays, thus resolving the dilemma of assigning hookworm species based on either post-mortem or egg sizes for the identification of hookworms.
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Affiliation(s)
- Thomas Stocker
- Sydney School of Veterinary Science, Faculty of Science, The University of Sydney, New South Wales 2006, Australia
| | - Michael P Ward
- Sydney School of Veterinary Science, Faculty of Science, The University of Sydney, New South Wales 2006, Australia
| | - Jan Šlapeta
- Sydney School of Veterinary Science, Faculty of Science, The University of Sydney, New South Wales 2006, Australia; The University of Sydney Institute for Infectious Diseases, New South Wales 2006, Australia.
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