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Rivero-Wendt CLG, Fernandes LG, Dos Santos AN, Brito IL, Dos Santos Jaques JA, Dos Santos Dos Anjos E, Fernandes CE. Effects of Chloramine T on zebrafish embryos malformations associated with cardiotoxicity and neurotoxicity. J Toxicol Environ Health A 2023:1-10. [PMID: 37185102 DOI: 10.1080/15287394.2023.2205271] [Citation(s) in RCA: 2] [Impact Index Per Article: 2.0] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Key Words] [Track Full Text] [Subscribe] [Scholar Register] [Indexed: 05/17/2023]
Abstract
Chloramine T, a sodium p-toluene sulfonchloramide, is known to possess a wide spectrum of biocidal activity and is employed as a disinfectant in fish farms to treat bacterial infections. Although Chloramine T may effectively combat pathogens, the sublethal and lethal effects and changes in acetylcholinesterase (AChE) activity remain poorly elucidated using Danio rerio (zebrafish) embryos. Zebrafish is considered a model organism for toxicant screening research and exhibits mammalian-like physiological responses when exposed to environmental pollutants. The aim of this study was to (1) determine LC50 of Chloramine T after 96 hr exposure, (2) verify disinfectant effects on developmental morphology, and (3) evaluate the disinfectant effects on AChE activity in zebrafish embryos. Chloramine T exposure was performed using 16, 32, 64, 128, or 256 mg/L concentrations. The mortality LC50 values were 143.05 ± 3.11 and 130.97 ± 7.4 mg/L at 24 and 96 hr, respectively. Data demonstrated delayed hatching, reduced heartbeats, cardiac edema, and equilibrium disruption of hatched larvae throughout embryonic development. In addition, Chloramine T inhibited AChE activity at 64 or 128 mg/L after 96 hr treatment, corroborating the sub-lethality results observed in zebrafish embryo development and demonstrating an equilibrium disruption in zebrafish larvae.
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Affiliation(s)
- Carla Letícia Gediel Rivero-Wendt
- Laboratório de Patologia Experimental (LAPEx), Instituto de Biociências Instituto de Biociências, Universidade Federal de Mato Grosso do Sul, Campo Grande, Brazil
| | - Luana Garcia Fernandes
- Laboratório de Patologia Experimental (LAPEx), Instituto de Biociências Instituto de Biociências, Universidade Federal de Mato Grosso do Sul, Campo Grande, Brazil
| | - Andreza Negreli Dos Santos
- Programa Multicêntrico de Pós-Graduação em Bioquímica e Biologia Molecular (PBBqBM), Instituto de Biociências (INBIO), Universidade Federal de Mato Grosso do Sul (UFMS), Campo Grande, Brazil
| | - Igor Leal Brito
- Programa Multicêntrico de Pós-Graduação em Bioquímica e Biologia Molecular (PBBqBM), Instituto de Biociências (INBIO), Universidade Federal de Mato Grosso do Sul (UFMS), Campo Grande, Brazil
- Programa de Pós-Graduação em Ciências Farmacêuticas (PPGFARM), Faculdade de Ciências Farmacêuticas, Alimentos e Nutrição (FACFAN), Universidade Federal de Mato Grosso do Sul (UFMS), Campo Grande, Brazil
| | - Jeandre Augusto Dos Santos Jaques
- Programa Multicêntrico de Pós-Graduação em Bioquímica e Biologia Molecular (PBBqBM), Instituto de Biociências (INBIO), Universidade Federal de Mato Grosso do Sul (UFMS), Campo Grande, Brazil
- Programa de Pós-Graduação em Ciências Farmacêuticas (PPGFARM), Faculdade de Ciências Farmacêuticas, Alimentos e Nutrição (FACFAN), Universidade Federal de Mato Grosso do Sul (UFMS), Campo Grande, Brazil
| | - Edson Dos Santos Dos Anjos
- Programa de Pós-Graduação em Química, Instituto de Química (INQUI), Universidade Federal de Mato Grosso do Sul (UFMS), Campo Grande, Brazil
- Programa de Pós-Graduação em Biotecnologia, Faculdade de Ciências Farmacêuticas, Alimentos e Nutrição (FACFAN), Universidade Federal de Mato Grosso do Sul (UFMS), Campo Grande, Brazil
| | - Carlos Eurico Fernandes
- Laboratório de Patologia Experimental (LAPEx), Instituto de Biociências Instituto de Biociências, Universidade Federal de Mato Grosso do Sul, Campo Grande, Brazil
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Cassemiro NS, Sanches LB, Kato NN, Ruller R, Carollo CA, de Mello JCP, Dos Santos Dos Anjos E, Silva DB. New derivatives of the iridoid specioside from fungal biotransformation. Appl Microbiol Biotechnol 2021; 105:7731-7741. [PMID: 34568964 DOI: 10.1007/s00253-021-11504-7] [Citation(s) in RCA: 2] [Impact Index Per Article: 0.7] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Key Words] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 12/28/2020] [Revised: 06/11/2021] [Accepted: 08/05/2021] [Indexed: 11/28/2022]
Abstract
Iridoids are widely found from species of Bignoniaceae family and exhibit several biological activities, such as anti-inflammatory, antimicrobial, antioxidant, and antitumor. Specioside is an iridoid found from Tabebuia species, mainly in Tabebuia aurea. Thus, here fungus-mediated biotransformation of the iridoid specioside was investigated by seven fungi. The fungus-mediated biotransformation reactions resulted in a total of nineteen different analogs by fungus Aspergillus niger, Aspergillus flavus, Aspergillus japonicus, Aspergillus terreus, Aspergillus niveus, Penicillium crustosum, and Thermoascus aurantiacus. Non-glycosylated specioside was the main metabolite observed. The other analogs were yielded from ester hydrolysis, hydroxylation, methylation, and hydrogenation reactions. The non-glycosylated specioside and coumaric acid were yielded by all fungi-mediated biotransformation. Thus, fungus applied in this study showed the ability to perform hydroxylation and glycosidic, as well as ester hydrolysis reactions from glycosylated iridoid. KEY POINTS: • The biotransformation of specioside by seven fungi yielded nineteen analogs. • The non-glycosylated specioside was the main analog obtained. • Ester hydrolysis, hydroxylation, methylation, and hydrogenation reactions were observe.
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Affiliation(s)
- Nadla Soares Cassemiro
- Laboratório de Produtos Naturais E Espectrometria de Massas (LaPNEM), Faculdade de Ciências Farmacêuticas, Alimentos E Nutrição (FACFAN), Universidade Federal Do Mato Grosso Do Sul, Av. Costa e Silva, s/nº, Campo Grande, MS, 79070-900, Brazil
| | - Luana Bonifácio Sanches
- Laboratório de Produtos Naturais E Espectrometria de Massas (LaPNEM), Faculdade de Ciências Farmacêuticas, Alimentos E Nutrição (FACFAN), Universidade Federal Do Mato Grosso Do Sul, Av. Costa e Silva, s/nº, Campo Grande, MS, 79070-900, Brazil
| | - Natalia Naomi Kato
- Laboratório de Produtos Naturais E Espectrometria de Massas (LaPNEM), Faculdade de Ciências Farmacêuticas, Alimentos E Nutrição (FACFAN), Universidade Federal Do Mato Grosso Do Sul, Av. Costa e Silva, s/nº, Campo Grande, MS, 79070-900, Brazil
| | - Roberto Ruller
- Laboratório de Bioquímica, Instituto de Biociências (INBIO), Universidade Federal de Mato Grosso Do Sul (UFMS), Campo Grande, MS, Brazil
| | - Carlos Alexandre Carollo
- Laboratório de Produtos Naturais E Espectrometria de Massas (LaPNEM), Faculdade de Ciências Farmacêuticas, Alimentos E Nutrição (FACFAN), Universidade Federal Do Mato Grosso Do Sul, Av. Costa e Silva, s/nº, Campo Grande, MS, 79070-900, Brazil
| | - João Carlos Palazzo de Mello
- Laboratório de Biologia Farmacêutica, Departamento de Farmácia, Universidade Estadual de Maringá, Maringá, PR, Brazil
| | - Edson Dos Santos Dos Anjos
- Laboratório de Bioquímica, Instituto de Biociências (INBIO), Universidade Federal de Mato Grosso Do Sul (UFMS), Campo Grande, MS, Brazil
| | - Denise Brentan Silva
- Laboratório de Produtos Naturais E Espectrometria de Massas (LaPNEM), Faculdade de Ciências Farmacêuticas, Alimentos E Nutrição (FACFAN), Universidade Federal Do Mato Grosso Do Sul, Av. Costa e Silva, s/nº, Campo Grande, MS, 79070-900, Brazil.
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