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Sokal A, Barba-Spaeth G, Hunault L, Fernández I, Broketa M, Meola A, Fourati S, Azzaoui I, Vandenberghe A, Lagouge-Roussey P, Broutin M, Roeser A, Bouvier-Alias M, Crickx E, Languille L, Fournier M, Michel M, Godeau B, Gallien S, Melica G, Nguyen Y, Canoui-Poitrine F, Pirenne F, Megret J, Pawlotsky JM, Fillatreau S, Reynaud CA, Weill JC, Rey FA, Bruhns P, Mahévas M, Chappert P. SARS-CoV-2 Omicron BA.1 breakthrough infection drives late remodeling of the memory B cell repertoire in vaccinated individuals. Immunity 2023; 56:2137-2151.e7. [PMID: 37543032 DOI: 10.1016/j.immuni.2023.07.007] [Citation(s) in RCA: 0] [Impact Index Per Article: 0] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Key Words] [MESH Headings] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 01/27/2023] [Revised: 05/12/2023] [Accepted: 07/06/2023] [Indexed: 08/07/2023]
Abstract
How infection by a viral variant showing antigenic drift impacts a preformed mature human memory B cell (MBC) repertoire remains an open question. Here, we studied the MBC response up to 6 months after SARS-CoV-2 Omicron BA.1 breakthrough infection in individuals previously vaccinated with three doses of the COVID-19 mRNA vaccine. Longitudinal analysis, using single-cell multi-omics and functional analysis of monoclonal antibodies from RBD-specific MBCs, revealed that a BA.1 breakthrough infection mostly recruited pre-existing cross-reactive MBCs with limited de novo response against BA.1-restricted epitopes. Reorganization of clonal hierarchy and new rounds of germinal center reactions, however, combined to maintain diversity and induce progressive maturation of the MBC repertoire against common Hu-1 and BA.1, but not BA.5-restricted, SARS-CoV-2 Spike RBD epitopes. Such remodeling was further associated with a marked improvement in overall neutralizing breadth and potency. These findings have fundamental implications for the design of future vaccination booster strategies.
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Affiliation(s)
- Aurélien Sokal
- Institut Necker Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Action thématique incitative sur programme-Avenir Team, Auto-Immune and Immune B cells, Université Paris Cité, Université Paris Est-Créteil, Créteil, France; Service de Médecine interne, Hôpital Beaujon, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université de Paris Cité, Clichy, France; Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Giovanna Barba-Spaeth
- Institut Pasteur, Université de Paris Cité, CNRS UMR 3569, Unité de Virologie Structurale, Paris, France
| | - Lise Hunault
- Institut Pasteur, Université de Paris Cité, INSERM UMR1222, Unit of Antibodies in Therapy and Pathology, Paris, France; Sorbonne University, ED394, Paris, France; Sorbonne Université, INSERM, CNRS, Centre d'Immunologie et des Maladies Infectieuses (CIMI-Paris), 75013 Paris, France
| | - Ignacio Fernández
- Institut Pasteur, Université de Paris Cité, CNRS UMR 3569, Unité de Virologie Structurale, Paris, France
| | - Matteo Broketa
- Institut Pasteur, Université de Paris Cité, INSERM UMR1222, Unit of Antibodies in Therapy and Pathology, Paris, France; Sorbonne University, ED394, Paris, France
| | - Annalisa Meola
- Institut Pasteur, Université de Paris Cité, CNRS UMR 3569, Unité de Virologie Structurale, Paris, France
| | - Slim Fourati
- Département de Virologie, Bactériologie, Hygiène et Mycologie-Parasitologie, Centre Hospitalier Universitaire Henri Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Créteil, France; INSERM U955, équipe 18. Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Imane Azzaoui
- Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France; INSERM U955, équipe 2. Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Alexis Vandenberghe
- Institut Necker Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Action thématique incitative sur programme-Avenir Team, Auto-Immune and Immune B cells, Université Paris Cité, Université Paris Est-Créteil, Créteil, France; Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France; INSERM U955, équipe 2. Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Pauline Lagouge-Roussey
- Institut Necker Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Action thématique incitative sur programme-Avenir Team, Auto-Immune and Immune B cells, Université Paris Cité, Université Paris Est-Créteil, Créteil, France; Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France; INSERM U955, équipe 2. Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Manon Broutin
- Institut Necker Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Action thématique incitative sur programme-Avenir Team, Auto-Immune and Immune B cells, Université Paris Cité, Université Paris Est-Créteil, Créteil, France; INSERM U955, équipe 2. Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Anais Roeser
- Institut Necker Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Action thématique incitative sur programme-Avenir Team, Auto-Immune and Immune B cells, Université Paris Cité, Université Paris Est-Créteil, Créteil, France; Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Magali Bouvier-Alias
- Département de Virologie, Bactériologie, Hygiène et Mycologie-Parasitologie, Centre Hospitalier Universitaire Henri Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Créteil, France; INSERM U955, équipe 18. Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Etienne Crickx
- Institut Necker Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Action thématique incitative sur programme-Avenir Team, Auto-Immune and Immune B cells, Université Paris Cité, Université Paris Est-Créteil, Créteil, France; Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France; INSERM U955, équipe 2. Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Laetitia Languille
- Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Morgane Fournier
- Institut Necker Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Action thématique incitative sur programme-Avenir Team, Auto-Immune and Immune B cells, Université Paris Cité, Université Paris Est-Créteil, Créteil, France; Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Marc Michel
- Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Bertrand Godeau
- Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Sébastien Gallien
- Service de Maladies Infectieuses, Centre Hospitalier Universitaire Henri Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Giovanna Melica
- Service de Maladies Infectieuses, Centre Hospitalier Universitaire Henri Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Yann Nguyen
- Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Cochin, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Paris, France
| | - Florence Canoui-Poitrine
- Département de Santé Publique, Unité de Recherche Clinique (URC), CEpiA (Clinical Epidemiology and Ageing), EA 7376- Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - France Pirenne
- INSERM U955, équipe 18. Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France; Etablissement Français du Sang (EFS) Ile de France, Créteil, France
| | - Jérôme Megret
- Plateforme de Cytométrie en Flux, Structure Fédérative de Recherche Necker, INSERM US24-CNRS UMS3633, Paris, France
| | - Jean-Michel Pawlotsky
- Département de Virologie, Bactériologie, Hygiène et Mycologie-Parasitologie, Centre Hospitalier Universitaire Henri Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Créteil, France; INSERM U955, équipe 18. Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Simon Fillatreau
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Université de Paris, Paris, France
| | - Claude-Agnès Reynaud
- Institut Necker Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Action thématique incitative sur programme-Avenir Team, Auto-Immune and Immune B cells, Université Paris Cité, Université Paris Est-Créteil, Créteil, France
| | - Jean-Claude Weill
- Institut Necker Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Action thématique incitative sur programme-Avenir Team, Auto-Immune and Immune B cells, Université Paris Cité, Université Paris Est-Créteil, Créteil, France
| | - Félix A Rey
- Institut Pasteur, Université de Paris Cité, CNRS UMR 3569, Unité de Virologie Structurale, Paris, France
| | - Pierre Bruhns
- Institut Pasteur, Université de Paris Cité, INSERM UMR1222, Unit of Antibodies in Therapy and Pathology, Paris, France
| | - Matthieu Mahévas
- Institut Necker Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Action thématique incitative sur programme-Avenir Team, Auto-Immune and Immune B cells, Université Paris Cité, Université Paris Est-Créteil, Créteil, France; Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France; INSERM U955, équipe 2. Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France.
| | - Pascal Chappert
- Institut Necker Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Action thématique incitative sur programme-Avenir Team, Auto-Immune and Immune B cells, Université Paris Cité, Université Paris Est-Créteil, Créteil, France; INSERM U955, équipe 2. Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France.
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Guillet S, Crickx E, Azzaoui I, Chappert P, Boutin E, Viallard JF, Rivière E, Gobert D, Galicier L, Malphettes M, Cheze S, Lefrere F, Audia S, Bonnotte B, Lambotte O, Noel N, Fain O, Moulis G, Hamidou M, Gerfaud-Valentin M, Marolleau JP, Terriou L, Martis N, Morin AS, Perlat A, Le Gallou T, Roy-Peaud F, Robbins A, Lega JC, Puyade M, Comont T, Limal N, Languille L, Zarrour A, Luka M, Menager M, Belmondo T, Hue S, Canoui-Poitrine F, Michel M, Godeau B, Mahévas M. Prolonged response after TPO-RA discontinuation in primary ITP: results of a prospective multicenter study. Blood 2023; 141:2867-2877. [PMID: 36893453 DOI: 10.1182/blood.2022018665] [Citation(s) in RCA: 3] [Impact Index Per Article: 3.0] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [MESH Headings] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 10/27/2022] [Revised: 01/30/2023] [Accepted: 02/18/2023] [Indexed: 03/11/2023] Open
Abstract
Sustained response off treatment (SROT) after thrombopoietin receptor agonist (TPO-RA) discontinuation has been reported in immune thrombocytopenia (ITP). This prospective multicenter interventional study enrolled adults with persistent or chronic primary ITP and complete response (CR) on TPO-RAs. The primary end point was the proportion of patients achieving SROT (platelet count >30 × 109/L and no bleeding) at week 24 (W24) with no other ITP-specific medications. Secondary end points included the proportion of sustained CR off-treatment (SCROT, platelet count >100 × 109/L and no bleeding) and SROT at W52, bleeding events, and pattern of response to a new course of TPO-RAs. We included 48 patients with a median age of 58.5 years; 30 of 48 had chronic ITP at TPO-RA initiation. In the intention-to-treat analysis, 27 of 48 achieved SROT, 15 of 48 achieved SCROT at W24; 25 of 48 achieved SROT, and 14 of 48 achieved SCROT at W52. No severe bleeding episode occurred in patients who relapsed. Among patients rechallenged with TPO-RA, 11 of 12 achieved CR. We found no significant clinical predictors of SROT at W24. Single-cell RNA sequencing revealed enrichment of a tumor necrosis factor α signaling via NF-κB signature in CD8+ T cells of patients with no sustained response after TPO-RA discontinuation, which was further confirmed by a significant overexpression of CD69 on CD8+ T cells at baseline in these patients as compared with those achieving SCROT/SROT. Our results strongly support a strategy based on progressive tapering and discontinuation of TPO-RAs for patients with chronic ITP who achieved a stable CR on treatment. This trial was registered at www.clinicaltrials.gov as #NCT03119974.
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Affiliation(s)
- Stéphanie Guillet
- Service de Médecine Interne, Centre National de Référence des Cytopénies Auto-Immunes de l'Adulte, Henri Mondor Hôpital, Fédération Hospitalo-Universitaire TRUE InnovaTive theRapy for immUne disordErs, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Etienne Crickx
- Service de Médecine Interne, Centre National de Référence des Cytopénies Auto-Immunes de l'Adulte, Henri Mondor Hôpital, Fédération Hospitalo-Universitaire TRUE InnovaTive theRapy for immUne disordErs, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
- INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Institut Necker Enfants Malades, ATIP-Avenir Team AI2B, Université de Paris Cité, Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
- INSERM UMR U1163,Imagine Institute, Laboratory of Immunogenetics of Pediatric Autoimmune Diseases, Université de Paris Cité, Paris, France
| | - Imane Azzaoui
- Service de Médecine Interne, Centre National de Référence des Cytopénies Auto-Immunes de l'Adulte, Henri Mondor Hôpital, Fédération Hospitalo-Universitaire TRUE InnovaTive theRapy for immUne disordErs, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
- INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Institut Necker Enfants Malades, ATIP-Avenir Team AI2B, Université de Paris Cité, Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
- INSERM U955, Équipe 2, Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Pascal Chappert
- INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Institut Necker Enfants Malades, ATIP-Avenir Team AI2B, Université de Paris Cité, Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
- INSERM U955, Équipe 2, Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Emmanuelle Boutin
- Unité de Recherche Clinique (Mondor), AP-HP, Henri Mondor Hôpitaux Universitaires, Créteil, France
- INSERM, Institut Mondor de Recherche Biomédicale, Équipe Clinical Epidemiology and Ageing, UPEC, Créteil, France
| | - Jean-François Viallard
- Service de Médecine Interne, Haut-Lévêque Hôpital, Université de Bordeaux, Bordeaux, France
| | - Etienne Rivière
- Service de Médecine Interne, Haut-Lévêque Hôpital, Université de Bordeaux, Bordeaux, France
| | - Delphine Gobert
- Service de Médecine Interne, Saint Antoine Hôpital, AP-HP, Sorbonne Université, Paris, France
| | - Lionel Galicier
- Service d'Immunologie Clinique, Saint Louis Hôpital, AP-HP, Université de Paris Cité, Paris, France
| | - Marion Malphettes
- Service d'Immunologie Clinique, Saint Louis Hôpital, AP-HP, Université de Paris Cité, Paris, France
| | - Stéphane Cheze
- Institut d'Hématologie de Basse-Normandie, Centre Hospitalier de Caen Normandie, Caen, France
| | | | - Sylvain Audia
- Service de Médecine Interne et d'Immunologie Clinique, Centre de Référence Constitutif des Cytopénies Auto-Immunes, Hôpital François Mitterrand, Centre Hospitalier Universitaire (CHU) Dijon-Bourgogne, Dijon, France
| | - Bernard Bonnotte
- Service de Médecine Interne et d'Immunologie Clinique, Centre de Référence Constitutif des Cytopénies Auto-Immunes, Hôpital François Mitterrand, Centre Hospitalier Universitaire (CHU) Dijon-Bourgogne, Dijon, France
| | - Olivier Lambotte
- Service de Médecine Interne et d'Immunologie Clinique, Hôpital Bicêtre, AP-HP, Université Paris-Saclay, Le Kremlin-Bicêtre, France
| | - Nicolas Noel
- Service de Médecine Interne et d'Immunologie Clinique, Hôpital Bicêtre, AP-HP, Université Paris-Saclay, Le Kremlin-Bicêtre, France
| | - Olivier Fain
- Service de Médecine Interne, Saint Antoine Hôpital, AP-HP, Sorbonne Université, Paris, France
| | - Guillaume Moulis
- Service de Médecine Interne, CHU de Toulouse, Toulouse, France
- CIC 1436, Équipe PEPSS, CHU de Toulouse, Toulouse, France
| | | | | | - Jean-Pierre Marolleau
- Service d'Hématologie Clinique et Thérapie Cellulaire, CHU Amiens-Picardie, Amiens, France
| | - Louis Terriou
- Service de Médecine Interne et d'Immunologie Clinique, CHU de Lille, Lille, France
| | - Nihal Martis
- Service de Médecine Interne et d'Immunologie Clinique, Hôpital de Nice, Nice, France
| | - Anne-Sophie Morin
- Service de Médecine Interne, Jean Verdier Hôpital, AP-HP, Bondy, France
| | - Antoinette Perlat
- Service de Médecine Interne et Immunologie Clinique, CHU de Rennes, Rennes, France
| | - Thomas Le Gallou
- Service de Médecine Interne et Immunologie Clinique, CHU de Rennes, Rennes, France
| | - Frédérique Roy-Peaud
- Service de Médecine Interne-Maladies Infectieuses et Tropicales, CHU de Poitiers, Poitiers, France
| | - Ailsa Robbins
- Department of Internal Medicine, Infectious Diseases, and Clinical Immunology, Robert Debré Hospital, Reims University Hospitals, Reims, France
| | - Jean-Christophe Lega
- Service de Médecine Interne, Hospices Civils de Lyon, Lyon Sud Hôpital, Pierre-Bénite, France
| | - Matthieu Puyade
- Service de Médecine Interne, CHU de Poitiers, Poitiers, France
| | - Thibault Comont
- Service de Médecine Interne, CHU de Toulouse (IUCT-Oncopole), Toulouse, France
| | - Nicolas Limal
- Service de Médecine Interne, Centre National de Référence des Cytopénies Auto-Immunes de l'Adulte, Henri Mondor Hôpital, Fédération Hospitalo-Universitaire TRUE InnovaTive theRapy for immUne disordErs, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Laetitia Languille
- Service de Médecine Interne, Centre National de Référence des Cytopénies Auto-Immunes de l'Adulte, Henri Mondor Hôpital, Fédération Hospitalo-Universitaire TRUE InnovaTive theRapy for immUne disordErs, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Anissa Zarrour
- Service de Médecine Interne, Centre National de Référence des Cytopénies Auto-Immunes de l'Adulte, Henri Mondor Hôpital, Fédération Hospitalo-Universitaire TRUE InnovaTive theRapy for immUne disordErs, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Marine Luka
- Université Paris Cité, Institut Imagine, Laboratory of Inflammatory Responses and Transcriptomic Networks in Diseases, Atip-Avenir Team, INSERM UMR 1163, F-75015 Paris, France
| | - Mickael Menager
- Université Paris Cité, Institut Imagine, Laboratory of Inflammatory Responses and Transcriptomic Networks in Diseases, Atip-Avenir Team, INSERM UMR 1163, F-75015 Paris, France
| | - Thibault Belmondo
- Département Immunologie-Hématologie, Henri Mondor Hôpital, AP-HP, UPEC, Créteil, France
- UPEC, Faculté de Médecine, Créteil, France
- Service de Santé Publique, AP-HP, Henri Mondor Hôpitaux Universitaires, Créteil, France
| | - Sophie Hue
- Département Immunologie-Hématologie, Henri Mondor Hôpital, AP-HP, UPEC, Créteil, France
- UPEC, Faculté de Médecine, Créteil, France
- INSERM U955, Équipe 16, Institut Mondor de Recherche Biomédicale, UPEC, Créteil, France
| | - Florence Canoui-Poitrine
- Unité de Recherche Clinique (Mondor), AP-HP, Henri Mondor Hôpitaux Universitaires, Créteil, France
- Service de Santé Publique, AP-HP, Henri Mondor Hôpitaux Universitaires, Créteil, France
| | - Marc Michel
- Service de Médecine Interne, Centre National de Référence des Cytopénies Auto-Immunes de l'Adulte, Henri Mondor Hôpital, Fédération Hospitalo-Universitaire TRUE InnovaTive theRapy for immUne disordErs, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Bertrand Godeau
- Service de Médecine Interne, Centre National de Référence des Cytopénies Auto-Immunes de l'Adulte, Henri Mondor Hôpital, Fédération Hospitalo-Universitaire TRUE InnovaTive theRapy for immUne disordErs, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Matthieu Mahévas
- Service de Médecine Interne, Centre National de Référence des Cytopénies Auto-Immunes de l'Adulte, Henri Mondor Hôpital, Fédération Hospitalo-Universitaire TRUE InnovaTive theRapy for immUne disordErs, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
- INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Institut Necker Enfants Malades, ATIP-Avenir Team AI2B, Université de Paris Cité, Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
- INSERM U955, Équipe 2, Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
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Sokal A, Bastard P, Chappert P, Barba-Spaeth G, Fourati S, Vanderberghe A, Lagouge-Roussey P, Meyts I, Gervais A, Bouvier-Alias M, Azzaoui I, Fernández I, de la Selle A, Zhang Q, Bizien L, Pellier I, Linglart A, Rothenbuhler A, Marcoux E, Anxionnat R, Cheikh N, Léger J, Amador-Borrero B, Fouyssac F, Menut V, Goffard JC, Storey C, Demily C, Mallebranche C, Troya J, Pujol A, Zins M, Tiberghien P, Gray PE, McNaughton P, Sullivan A, Peake J, Levy R, Languille L, Rodiguez-Gallego C, Boisson B, Gallien S, Neven B, Michel M, Godeau B, Abel L, Rey FA, Weill JC, Reynaud CA, Tangye SG, Casanova JL, Mahévas M. Human type I IFN deficiency does not impair B cell response to SARS-CoV-2 mRNA vaccination. J Exp Med 2023; 220:213666. [PMID: 36342455 DOI: 10.1084/jem.20220258] [Citation(s) in RCA: 7] [Impact Index Per Article: 7.0] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 02/11/2022] [Revised: 08/02/2022] [Accepted: 10/05/2022] [Indexed: 11/09/2022] Open
Abstract
Inborn and acquired deficits of type I interferon (IFN) immunity predispose to life-threatening COVID-19 pneumonia. We longitudinally profiled the B cell response to mRNA vaccination in SARS-CoV-2 naive patients with inherited TLR7, IRF7, or IFNAR1 deficiency, as well as young patients with autoantibodies neutralizing type I IFNs due to autoimmune polyendocrine syndrome type-1 (APS-1) and older individuals with age-associated autoantibodies to type I IFNs. The receptor-binding domain spike protein (RBD)-specific memory B cell response in all patients was quantitatively and qualitatively similar to healthy donors. Sustained germinal center responses led to accumulation of somatic hypermutations in immunoglobulin heavy chain genes. The amplitude and duration of, and viral neutralization by, RBD-specific IgG serological response were also largely unaffected by TLR7, IRF7, or IFNAR1 deficiencies up to 7 mo after vaccination in all patients. These results suggest that induction of type I IFN is not required for efficient generation of a humoral response against SARS-CoV-2 by mRNA vaccines.
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Affiliation(s)
- Aurélien Sokal
- Necker Enfants Malades Institute, INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Action thématique incitative sur programme-Avenir Team Auto-Immune and Immune B cell, University Paris Cité, University Paris-Est-Créteil, Créteil, France
| | - Paul Bastard
- Laboratory of Human Genetics of Infectious Diseases, Necker Branch, INSERM U1163, Necker Hospital for Sick Children, Paris, France.,Imagine Institute, University Paris Cité, Paris, France.,Department of Pediatrics, Necker Hospital for Sick Children, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Paris, France.,St. Giles Laboratory of Human Genetics of Infectious Diseases, Rockefeller Branch, The Rockefeller University, New York, NY
| | - Pascal Chappert
- Necker Enfants Malades Institute, INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Action thématique incitative sur programme-Avenir Team Auto-Immune and Immune B cell, University Paris Cité, University Paris-Est-Créteil, Créteil, France.,INSERM U955, team 2. Mondor Biomedical Research Institute, Paris-Est Créteil University, Créteil, France
| | - Giovanna Barba-Spaeth
- Institut Pasteur, University Paris Cité, CNRS UMR 3569, Structural Virology Unit, Paris, France
| | - Slim Fourati
- Virology, Bacteriology, Hygiene and Mycology-Parasitology, Henri Mondor University Hospital, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Créteil, France.,INSERM U955, team 18. Mondor Biomedical Research Institute, Paris-Est Créteil University, Créteil, France
| | - Alexis Vanderberghe
- INSERM U955, team 2. Mondor Biomedical Research Institute, Paris-Est Créteil University, Créteil, France.,Departement of Internal Medicine, Henri Mondor University Hospital, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Paris-Est Créteil University, Créteil, France
| | - Pauline Lagouge-Roussey
- INSERM U955, team 2. Mondor Biomedical Research Institute, Paris-Est Créteil University, Créteil, France.,Departement of Internal Medicine, Henri Mondor University Hospital, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Paris-Est Créteil University, Créteil, France
| | - Isabelle Meyts
- Department of Immunology and Microbiology, Laboratory for Inborn Errors of Immunity, Department of Pediatrics, University Hospitals Leuven and Katholieke Universiteit Leuven, Leuven, Belgium
| | - Adrian Gervais
- Laboratory of Human Genetics of Infectious Diseases, Necker Branch, INSERM U1163, Necker Hospital for Sick Children, Paris, France.,Imagine Institute, University Paris Cité, Paris, France
| | - Magali Bouvier-Alias
- Virology, Bacteriology, Hygiene and Mycology-Parasitology, Henri Mondor University Hospital, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Créteil, France.,INSERM U955, team 18. Mondor Biomedical Research Institute, Paris-Est Créteil University, Créteil, France
| | - Imane Azzaoui
- INSERM U955, team 2. Mondor Biomedical Research Institute, Paris-Est Créteil University, Créteil, France.,Departement of Internal Medicine, Henri Mondor University Hospital, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Paris-Est Créteil University, Créteil, France
| | - Ignacio Fernández
- Institut Pasteur, University Paris Cité, CNRS UMR 3569, Structural Virology Unit, Paris, France
| | - Andréa de la Selle
- Necker Enfants Malades Institute, INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Action thématique incitative sur programme-Avenir Team Auto-Immune and Immune B cell, University Paris Cité, University Paris-Est-Créteil, Créteil, France
| | - Qian Zhang
- Laboratory of Human Genetics of Infectious Diseases, Necker Branch, INSERM U1163, Necker Hospital for Sick Children, Paris, France.,Imagine Institute, University Paris Cité, Paris, France.,St. Giles Laboratory of Human Genetics of Infectious Diseases, Rockefeller Branch, The Rockefeller University, New York, NY
| | - Lucy Bizien
- Laboratory of Human Genetics of Infectious Diseases, Necker Branch, INSERM U1163, Necker Hospital for Sick Children, Paris, France.,Imagine Institute, University Paris Cité, Paris, France
| | - Isabelle Pellier
- Pediatric Immuno-hemato-oncology Unit, Centre Hospitalier Universitaire Angers, Angers, France.,University Angers, Nantes university, Centre Hospitalier Universitaire Angers, INSERM, CRCI2NA, SFR ICAT, Angers, France
| | - Agnès Linglart
- Departement of Pediatric Endocrinology, Bicêtre University Hospital, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Paris Saclay University, Le Kremlin-Bicêtre, France
| | - Anya Rothenbuhler
- Departement of Pediatric Endocrinology, Bicêtre University Hospital, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Paris Saclay University, Le Kremlin-Bicêtre, France
| | - Estelle Marcoux
- Department of Pediatrics, Nord Franche Comté Hospital, Trévenans, France
| | | | - Nathalie Cheikh
- Department of Pediatrics, Besançon Hospital, Besançon, France
| | - Juliane Léger
- Department of Pediatric Endocrinology and INSERM NeuroDiderot, Referral Centre for Endocrine, Growth and Development diseases, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris Nord, University of Paris, Paris, France
| | - Blanca Amador-Borrero
- Department of Internal Medicine, Lariboisière University Hospital, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, University of Paris, Paris, France
| | - Fanny Fouyssac
- Department of Pediatric Hemato-oncology, Childrens Hospital, Nancy University Hospital, Nancy, France
| | - Vanessa Menut
- Department of Pediatrics, Mother-Child Hospital, Nantes, France
| | - Jean-Christophe Goffard
- Department of Internal Medicine, Université Libre de Bruxelles-Hôpitaux Universitaire de Bruxelles, Erasme Hospital, Bruxelles, Belgique
| | - Caroline Storey
- Departement of Pediatric Endocrinology, Robert Debré Hospital, Assistance Publique Hôpitaux de Paris, Paris, France
| | - Caroline Demily
- GénoPsy Referral Center, Centre de Référence de Maladies Rares Rare Disease with Psychiatric Epression, Le Vinatier Hospital, Bron, France
| | - Coralie Mallebranche
- Pediatric Immuno-hemato-oncology Unit, Centre Hospitalier Universitaire Angers, Angers, France.,University Angers, Nantes university, Centre Hospitalier Universitaire Angers, INSERM, CRCI2NA, SFR ICAT, Angers, France
| | - Jesus Troya
- Department of Internal Medicine, Infanta Leonor University Hospital, Madrid, Spain
| | - Aurora Pujol
- Neurometabolic Diseases Laboratory, Institut d'Investigació Biomèdica de Bellvitge-Hospital Duran i Reynals, Centro de Investigación Biomédica en Red de Enfermededas Raras U759, and Catalan Institution of Research and Advanced Studies, Barcelona, Spain
| | - Marie Zins
- University of Paris, University of Paris-Saclay, Université de Versailles Saint-Quentin-en-Yvelines, INSERM UMS11, Villejuif, France
| | - Pierre Tiberghien
- French Blood Agency, La Plaine Saint-Denis, France.,UMR1098 RIGHT, INSERM, French Blood Agency, Franche-Comté University, Besançon, France
| | - Paul E Gray
- Department of Immunology and Infectious Diseases, Sydney Children's Hospital, Randwick, New South Wales, Australia.,School of Women's and Children's Health, University of New South Wales, Sydney, Australia.,Clinical Immunogenomics Research Consortium of Australasia, Sydney, Australia
| | - Peter McNaughton
- Clinical Immunogenomics Research Consortium of Australasia, Sydney, Australia.,Queensland Paediatric Immunology and Allergy Service, Children's Health Queensland, Brisbane, Australia
| | - Anna Sullivan
- Clinical Immunogenomics Research Consortium of Australasia, Sydney, Australia.,Queensland Paediatric Immunology and Allergy Service, Children's Health Queensland, Brisbane, Australia
| | - Jane Peake
- Clinical Immunogenomics Research Consortium of Australasia, Sydney, Australia.,Queensland Paediatric Immunology and Allergy Service, Children's Health Queensland, Brisbane, Australia.,University of Queensland, Brisbane, Australia
| | - Romain Levy
- Laboratory of Human Genetics of Infectious Diseases, Necker Branch, INSERM U1163, Necker Hospital for Sick Children, Paris, France.,Imagine Institute, University Paris Cité, Paris, France.,Department of Pediatric Immuno-Haematology and Rheumatology, Necker-Enfants Malades University Hospital, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Paris, France
| | - Laetitia Languille
- Departement of Internal Medicine, Henri Mondor University Hospital, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Paris-Est Créteil University, Créteil, France
| | - Carlos Rodiguez-Gallego
- Department of Immunology, Hospital Universitario de G.C. Dr. Negrín, Canarian Health System, Las Palmas de Gran Canaria, Spain.,University Fernando Pessoa Canarias, Las Palmas de Gran Canaria, Spain
| | - Bertrand Boisson
- Laboratory of Human Genetics of Infectious Diseases, Necker Branch, INSERM U1163, Necker Hospital for Sick Children, Paris, France.,Imagine Institute, University Paris Cité, Paris, France.,St. Giles Laboratory of Human Genetics of Infectious Diseases, Rockefeller Branch, The Rockefeller University, New York, NY
| | - Sébastien Gallien
- Department of Infectious Diseases, Henri Mondor University Hospital, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Paris-Est Créteil University, Créteil, France
| | - Bénédicte Neven
- Department of Pediatric Immuno-Haematology and Rheumatology, Necker-Enfants Malades University Hospital, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Paris, France
| | - Marc Michel
- Departement of Internal Medicine, Henri Mondor University Hospital, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Paris-Est Créteil University, Créteil, France
| | - Bertrand Godeau
- Departement of Internal Medicine, Henri Mondor University Hospital, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Paris-Est Créteil University, Créteil, France
| | - Laurent Abel
- Laboratory of Human Genetics of Infectious Diseases, Necker Branch, INSERM U1163, Necker Hospital for Sick Children, Paris, France.,Imagine Institute, University Paris Cité, Paris, France.,St. Giles Laboratory of Human Genetics of Infectious Diseases, Rockefeller Branch, The Rockefeller University, New York, NY
| | - Felix A Rey
- Institut Pasteur, University Paris Cité, CNRS UMR 3569, Structural Virology Unit, Paris, France
| | - Jean-Claude Weill
- Necker Enfants Malades Institute, INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Action thématique incitative sur programme-Avenir Team Auto-Immune and Immune B cell, University Paris Cité, University Paris-Est-Créteil, Créteil, France
| | - Claude-Agnès Reynaud
- Necker Enfants Malades Institute, INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Action thématique incitative sur programme-Avenir Team Auto-Immune and Immune B cell, University Paris Cité, University Paris-Est-Créteil, Créteil, France
| | - Stuart G Tangye
- Clinical Immunogenomics Research Consortium of Australasia, Sydney, Australia.,Garvan Institute of Medical Research, Darlinghurst, Sydney, New South Wales, Australia.,St Vincent's Clinical School, Faculty of Medicine & Health, University of New South Wales, Sydney, New South Wales, Australia
| | - Jean-Laurent Casanova
- Laboratory of Human Genetics of Infectious Diseases, Necker Branch, INSERM U1163, Necker Hospital for Sick Children, Paris, France.,Imagine Institute, University Paris Cité, Paris, France.,Department of Pediatrics, Necker Hospital for Sick Children, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Paris, France.,St. Giles Laboratory of Human Genetics of Infectious Diseases, Rockefeller Branch, The Rockefeller University, New York, NY.,Howard Hughes Medical Institute, New York, NY
| | - Matthieu Mahévas
- Necker Enfants Malades Institute, INSERM U1151/CNRS UMR 8253, Action thématique incitative sur programme-Avenir Team Auto-Immune and Immune B cell, University Paris Cité, University Paris-Est-Créteil, Créteil, France.,INSERM U955, team 2. Mondor Biomedical Research Institute, Paris-Est Créteil University, Créteil, France.,Departement of Internal Medicine, Henri Mondor University Hospital, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Paris-Est Créteil University, Créteil, France
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Attias P, Azzaoui I, El Karoui K, de La Selle A, Sokal A, Chappert P, Grimbert P, Fernandez I, Bouvier M, Samson C, Dahmane D, Rieu P, Nizard P, Fourati S, Sakhi H, Mahévas M. Immune Responses after a Third Dose of mRNA Vaccine Differ in Virus-Naive versus SARS-CoV-2- Recovered Dialysis Patients. Clin J Am Soc Nephrol 2022; 17:1008-1016. [PMID: 35764393 PMCID: PMC9269639 DOI: 10.2215/cjn.00830122] [Citation(s) in RCA: 5] [Impact Index Per Article: 2.5] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Key Words] [MESH Headings] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 01/19/2022] [Accepted: 05/16/2022] [Indexed: 11/23/2022]
Abstract
BACKGROUND AND OBJECTIVES After two doses of mRNA vaccine against severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2), patients on dialysis show a defective humoral response, but a third dose could increase anti-SARS-CoV-2 spike IgG titers. Responses could be different in virus-naive and SARS-CoV-2-recovered patients on dialysis. However, characterization of memory B cell response after three doses is lacking. DESIGN, SETTING, PARTICIPANTS, & MEASUREMENTS We evaluated the dynamics of antireceptor binding domain IgG titers and antireceptor binding domain memory B cells until 6 months after two and three doses (administered within 6 months after the second dose) of mRNA vaccine in SARS-CoV-2-recovered and virus-naive dialysis populations. Results were analyzed by ordinary one-way ANOVA, the Kruskal-Wallis test, or the Wilcoxon matched-pairs test as appropriate. RESULTS In total, 108 individuals (59 patients on dialysis and 49 controls) were included. In virus-naive patients on dialysis, antireceptor binding domain IgG response was quantitatively lower after two doses compared with healthy controls, but IgG titers increased by three-fold after three doses (P=0.008). In SARS-CoV-2-recovered patients on dialysis, antireceptor binding domain IgG titers after two doses were significantly higher compared with virus-naive patients on dialysis but did not significantly increase after a third dose. Regarding memory B cell response, we detected receptor binding domain-specific memory B cells at similar proportions in virus-naive patients on dialysis and vaccinated controls after two doses. Moreover, a strong receptor binding domain-specific memory B cell expansion was observed after the third dose in virus-naive patients on dialysis (5.5-fold; P<0.001). However, in SARS-CoV-2-recovered patients on dialysis, antireceptor binding domain memory B cells remained unchanged after the third dose. CONCLUSIONS The third dose of mRNA vaccine given within 6 months after the second dose boosts serologic and memory response in virus-naive patients but not in SARS-CoV-2-recovered patients on dialysis. CLINICAL TRIAL REGISTRY NAME AND REGISTRATION NUMBER COVID-19: SARS-CoV-2 Specific Memory B and T-CD4+ Cells (MEMO-COV2), NCT04402892.
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Affiliation(s)
- Philippe Attias
- Department of Nephrology and Dialysis, Hôpital Privé Nord Parisien, Sarcelles, France
| | - Imane Azzaoui
- Department of Internal medicine, Centre Hospitalier Universitaire Henri Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Université Paris Est Créteil, Creteil, France
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médical U955, Équipe 2, Transfusion and pathologies of the red blood cell, Institut Mondor de Recherche Biomédicale, Université Paris Est Créteil, Creteil, France
| | - Khalil El Karoui
- Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Hôpitaux Universitaires Henri Mondor, Department of Nephrology, Centre de Référence Maladie Rare Syndrome Néphrotique Idiopathique, Fédération Hospitalo-Universitaire Innovative Therapy for Immune Disorders, Creteil, France
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médical U955, Équipe 21, Pathophysiology of glomerular diseases, Institut Mondor de Recherche Biomédicale, Université Paris Est Créteil, Creteil, France
| | - Andréa de La Selle
- Institut Necker Enfants Malades, Institut National de la Santé et de la Recherche Médical U1151/Centre National de Recherche Scientifique Unité Mixtes de Service 8253, Université de Paris, Paris, France
| | - Aurélien Sokal
- Department of Internal medicine, Centre Hospitalier Universitaire Henri Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Université Paris Est Créteil, Creteil, France
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médical U955, Équipe 2, Transfusion and pathologies of the red blood cell, Institut Mondor de Recherche Biomédicale, Université Paris Est Créteil, Creteil, France
| | - Pascal Chappert
- Institut Necker Enfants Malades, Institut National de la Santé et de la Recherche Médical U1151/Centre National de Recherche Scientifique Unité Mixtes de Service 8253, Université de Paris, Paris, France
- Institut Pasteur, Unité de Virologie Structurale, Centre National de Recherche Scientifique Unité Mixte de Recherche 3569, Paris, France
| | - Philippe Grimbert
- Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Hôpitaux Universitaires Henri Mondor, Department of Nephrology, Centre de Référence Maladie Rare Syndrome Néphrotique Idiopathique, Fédération Hospitalo-Universitaire Innovative Therapy for Immune Disorders, Creteil, France
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médical U955, Équipe 21, Pathophysiology of glomerular diseases, Institut Mondor de Recherche Biomédicale, Université Paris Est Créteil, Creteil, France
| | - Ignacio Fernandez
- Institut Pasteur, Unité de Virologie Structurale, Centre National de Recherche Scientifique Unité Mixte de Recherche 3569, Paris, France
| | - Magali Bouvier
- Département de Virologie, Bactériologie, Hygiène et Mycologie-Parasitologie, Centre Hospitalier Universitaire Henri Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Creteil, France
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médical U955, Équipe 18, Viruses, Hepatology, Cancer, Institut Mondor de Recherche Biomédicale, Université Paris Est Créteil, Creteil, France
| | - Chloé Samson
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médical U955, Équipe 21, Pathophysiology of glomerular diseases, Institut Mondor de Recherche Biomédicale, Université Paris Est Créteil, Creteil, France
| | - Djamal Dahmane
- Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Hôpitaux Universitaires Henri Mondor, Department of Nephrology, Centre de Référence Maladie Rare Syndrome Néphrotique Idiopathique, Fédération Hospitalo-Universitaire Innovative Therapy for Immune Disorders, Creteil, France
| | - Philippe Rieu
- Department of Nephrology and Dialysis, Hôpital Privé Nord Parisien, Sarcelles, France
| | | | - Slim Fourati
- Département de Virologie, Bactériologie, Hygiène et Mycologie-Parasitologie, Centre Hospitalier Universitaire Henri Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Creteil, France
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médical U955, Équipe 18, Viruses, Hepatology, Cancer, Institut Mondor de Recherche Biomédicale, Université Paris Est Créteil, Creteil, France
| | - Hamza Sakhi
- Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Hôpitaux Universitaires Henri Mondor, Department of Nephrology, Centre de Référence Maladie Rare Syndrome Néphrotique Idiopathique, Fédération Hospitalo-Universitaire Innovative Therapy for Immune Disorders, Creteil, France
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médical U955, Équipe 21, Pathophysiology of glomerular diseases, Institut Mondor de Recherche Biomédicale, Université Paris Est Créteil, Creteil, France
| | - Matthieu Mahévas
- Department of Internal medicine, Centre Hospitalier Universitaire Henri Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Université Paris Est Créteil, Creteil, France
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médical U955, Équipe 2, Transfusion and pathologies of the red blood cell, Institut Mondor de Recherche Biomédicale, Université Paris Est Créteil, Creteil, France
- Institut Necker Enfants Malades, Institut National de la Santé et de la Recherche Médical U1151/Centre National de Recherche Scientifique Unité Mixtes de Service 8253, Université de Paris, Paris, France
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Sokal A, Bastard P, Chappert P, Barba-Spaeth G, Fourati S, Vandenberghe A, Meyts I, Gervais A, Bouvier-Alias M, Azzaoui I, Fernandez I, De La Selle A, Zhang Q, Bizien L, Michel M, Godeau B, Weill J, Reynaud C, Casanova J, Mahevas M. Le déficit en interféron de type I n’altère pas la réponse lymphocytaire B mémoire contre le SARS-CoV-2 après vaccination par ARNm. Rev Med Interne 2022. [PMCID: PMC9212793 DOI: 10.1016/j.revmed.2022.03.290] [Citation(s) in RCA: 0] [Impact Index Per Article: 0] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Abstract] [Track Full Text] [Download PDF] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Indexed: 11/18/2022]
Abstract
Introduction Les vaccins à ARN messagers ont joué un rôle majeur dans la lutte contre la pandémie de SARS-CoV-2 grâce à une excellente efficacité et sécurité clinique. Ces vaccins ont été développés suite à des années de recherche fondamentale, dont l’une des étapes cruciales a été de remplacer l’uridine de l’ARNm par de la 1-méthyl-pseudo-uridine afin d’éviter la reconnaissance par les récepteurs de l’immunité innée, notamment le toll-like-receptor (TLR) 7. Une hypothèse, très fréquemment défendue mais jamais étayée expérimentalement, est que cet ARN modifié garde une activité immunostimulatrice à bas bruit permettant la production d’interféron de type I, agissant comme un adjuvant du vaccin. Les interférons de type I sont des cytokines antivirales essentielles et les patients ayant un déficit dans les voies de l’interféron de type I sont à haut risque de COVID-19 sévère. Dans ce travail, nous avons analysé la réponse lymphocytaire B au vaccin à ARNm de patients présentant l’absence de signalisation par les interférons de type I. Ceci nous a permis de savoir si les vaccins par ARNm permettaient d’établir une réponse lymphocytaire B robuste en l’absence d’interféron de type I. Patients et méthodes Nous avons constitué trois cohortes de patients (i) des patients avec des déficits génétiques sur les voies de l’interféron de type I : 2 patients avec une mutation homozygote d’IRF7 (facteur de transcription responsable de la production d’interférons de Type I, notamment en aval de TLR7) et un patient avec une déficit hémizygote de TLR7 (ii) des patients ayant des auto-anticorps neutralisant les interférons alpha et oméga, dans le cadre d’une polyendocrinopathie auto-immune de type I (APS-1, n = 14) (iii) des patients ayant des auto-anticorps neutralisant les interféron, associés à l’âge, une entité récemment décrite et particulièrement fréquente chez les sujets âgés (n = 8). Ces sujets ont été comparés à 29 contrôles sains. Tous étaient naïfs du COVID-19 et ont reçu 2 doses de vaccin à ARNm (BNT162n2 ou mRNA1273). Les patients ont été prélevés à différents point de temps, dans les 3 premiers mois et entre 3 et 7 mois après la seconde dose. La réponse sérologique a été évaluée par ELISA anti-IgG et IgA RBD (receptor binding domain de la Spike) et la neutralisation sérique a été testée in vitro contre le D614G-SARS-CoV-2. Les lymphocytes B (LB) mémoires CD19 + IgD-CD27± spécifiques du RBD ont été analysés en cytométrie en flux et triés en cellule unique pour séquençage des régions variables de la chaîne lourde de l’immunoglobuline. Résultats La réponse sérologique anti-RBD IgG et IgA était comparable aux temps précoces et tardifs de la réponse vaccinale, évoluant de façon similaire chez les patients déficients en interféron de type I et les sujets sains. La capacité de neutralisation des sérums contre le SARS-CoV-2 était également identique dans tous les groupes, et corrélait fortement avec le taux d’IgG anti-RBD, suggérant que le RBD était également la cible de la réponse neutralisante chez les patients déficients en interféron de type I. Des LB mémoires circulants spécifiques du RBD étaient retrouvés dans toutes les cohortes de patients déficients en interféron de type I au cours des 3 mois suivant la vaccination. Ceux-ci se maintenaient dans le temps et étaient encore présents entre 3 et 7 mois après la vaccination (0,18 % des LB IgD-CD27+ chez les sujets sains, 0,24 % chez les sujets avec déficit génétiques, 0,16 % chez les APS-1 et 0,26 % chez les AAB, pas de différence statistiquement significative). Le séquençage de la chaîne lourde des régions variables de l’immunoglobuline des LB mémoires spécifiques du RBD révélait l’accumulation progressive des mutations jusqu’à 7 mois chez les sujets sains, témoignant d’une réaction des centres germinatifs permettant la maturation d’affinité et la génération de lymphocytes B mémoires à longue durée de vie. Chez les patients IRF7 déficients, les LB mémoires spécifiques du RBD acquerraient progressivement des mutations de M1 à M6, et les LB mémoires spécifiques du RBD de patients TLR7 et APS-1 arboraient un nombre élevé de mutation dès M4, témoignant que même en l’absence de réponse à l’interféron de type I, le vaccin permettait la génération des LB mémoire issus des centres germinatifs, comme chez les sujets sains. Enfin, des clones partagés étaient retrouvés entre les sujets sains et les patients déficient en interféron de type I témoignant d’une réponse qualitativement normale. Conclusion Notre travail apporte des données rassurantes sur la vaccination de ces patients à haut risque de forme de grave de COVID-19 et suggère que l’ARNm contenu dans les vaccins n’a pas de rôle adjuvant intrinsèque.
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Canales-Herrerias P, Crickx E, Broketa M, Sokal A, Chenon G, Azzaoui I, Vandenberghe A, Perima A, Iannascoli B, Richard-Le Goff O, Castrillon C, Mottet G, Sterlin D, Robbins A, Michel M, England P, Millot GA, Eyer K, Baudry J, Mahevas M, Bruhns P. High-affinity autoreactive plasma cells disseminate through multiple organs in patients with immune thrombocytopenic purpura. J Clin Invest 2022; 132:153580. [PMID: 35503254 PMCID: PMC9197514 DOI: 10.1172/jci153580] [Citation(s) in RCA: 10] [Impact Index Per Article: 5.0] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Key Words] [Track Full Text] [Download PDF] [Figures] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 07/27/2021] [Accepted: 04/28/2022] [Indexed: 11/17/2022] Open
Abstract
The major therapeutic goal for immune thrombocytopenic purpura (ITP) is to restore normal platelet counts using drugs to promote platelet production or by interfering with mechanisms responsible for platelet destruction. Eighty percent of patients with ITP possess anti–integrin αIIbβ3 IgG autoantibodies that cause platelet opsonization and phagocytosis. The spleen is considered the primary site of autoantibody production by autoreactive B cells and platelet destruction. The immediate failure in approximately 50% of patients to recover a normal platelet count after anti-CD20 rituximab-mediated B cell depletion and splenectomy suggests that autoreactive, rituximab-resistant, IgG-secreting B cells (IgG-SCs) reside in other anatomical compartments. We analyzed more than 3,300 single IgG-SCs from spleen, bone marrow, and/or blood of 27 patients with ITP, revealing high interindividual variability in affinity for αIIbβ3, with variations over 3 logs. IgG-SC dissemination and range of affinities were, however, similar for each patient. Longitudinal analysis of autoreactive IgG-SCs upon treatment with the anti-CD38 mAb daratumumab demonstrated variable outcomes, from complete remission to failure with persistence of high-affinity anti–αIIbβ3 IgG-SCs in the bone marrow. This study demonstrates the existence and dissemination of high-affinity autoreactive plasma cells in multiple anatomical compartments of patients with ITP that may cause the failure of current therapies.
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Affiliation(s)
| | - Etienne Crickx
- INSERM U1151/CNRS UMS8253, Institut Necker-Enfants Malades, Paris, France
| | - Matteo Broketa
- Department of Immunology, Institut Pasteur, Paris, France
| | - Aurélien Sokal
- INSERM U1151/CNRS UMS8253, Institut Necker-Enfants Malades, Paris, France
| | - Guilhem Chenon
- Laboratoire Colloïdes et Matériaux Divisés (LCMD), ESPCI, Paris, France
| | - Imane Azzaoui
- Service de Médecine Interne, Assistance Publique Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris Est Créteil, Paris, France
| | - Alexis Vandenberghe
- Service de Médecine Interne, Assistance Publique Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris Est Créteil, Paris, France
| | - Angga Perima
- Department of Immunology, Institut Pasteur, Paris, France
| | | | | | | | | | | | - Ailsa Robbins
- Department of Internal Medicine, Infectious Diseases, and Clinical Immunolo, Robert Debré Hospital, Reims University Hospitals, Reims, France
| | - Marc Michel
- Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Créteil, France
| | - Patrick England
- Plateforme de Biophysique Moléculaire, Institut Pasteur, Paris, France
| | - Gael A Millot
- Hub Bioinformatique et Biostatistique, Institut Pasteur, Paris, France
| | - Klaus Eyer
- Laboratory for Functional Immune Repertoire Analysis, ETH Zurich, Zurich, Switzerland
| | - Jean Baudry
- Laboratoire Colloïdes et Matériaux Divisés (LCMD), ESPCI, Paris, France
| | - Matthieu Mahevas
- INSERM U1151/CNRS UMS8253, Institut Necker-Enfants Malades, Paris, France
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Sokal A, Broketa M, Barba-Spaeth G, Meola A, Fernández I, Fourati S, Azzaoui I, de La Selle A, Vandenberghe A, Roeser A, Bouvier-Alias M, Crickx E, Languille L, Michel M, Godeau B, Gallien S, Melica G, Nguyen Y, Zarrouk V, Canoui-Poitrine F, Noizat-Pirenne F, Megret J, Pawlotsky JM, Fillatreau S, Simon-Lorière E, Weill JC, Reynaud CA, Rey FA, Bruhns P, Chappert P, Mahévas M. Analysis of mRNA vaccination-elicited RBD-specific memory B cells reveals strong but incomplete immune escape of the SARS-CoV-2 Omicron variant. Immunity 2022; 55:1096-1104.e4. [PMID: 35483354 PMCID: PMC8986479 DOI: 10.1016/j.immuni.2022.04.002] [Citation(s) in RCA: 32] [Impact Index Per Article: 16.0] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Abstract] [Track Full Text] [Download PDF] [Figures] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 12/21/2021] [Revised: 02/16/2022] [Accepted: 04/04/2022] [Indexed: 11/05/2022]
Abstract
The SARS-CoV-2 Omicron variant can escape neutralization by vaccine-elicited and convalescent antibodies. Memory B cells (MBCs) represent another layer of protection against SARS-CoV-2, as they persist after infection and vaccination and improve their affinity. Whether MBCs elicited by mRNA vaccines can recognize the Omicron variant remains unclear. We assessed the affinity and neutralization potency against the Omicron variant of several hundred naturally expressed MBC-derived monoclonal IgG antibodies from vaccinated COVID-19-recovered and -naive individuals. Compared with other variants of concern, Omicron evaded recognition by a larger proportion of MBC-derived antibodies, with only 30% retaining high affinity against the Omicron RBD, and the reduction in neutralization potency was even more pronounced. Nonetheless, neutralizing MBC clones could be found in all the analyzed individuals. Therefore, despite the strong immune escape potential of the Omicron variant, these results suggest that the MBC repertoire generated by mRNA vaccines still provides some protection against the Omicron variant in vaccinated individuals.
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Le Gallou S, Lhomme F, Irish JM, Mingam A, Pangault C, Monvoisin C, Ferrant J, Azzaoui I, Rossille D, Bouabdallah K, Damaj G, Cartron G, Godmer P, Le Gouill S, Casasnovas RO, Molina TJ, Houot R, Lamy T, Tarte K, Fest T, Roussel M. Nonclassical Monocytes Are Prone to Migrate Into Tumor in Diffuse Large B-Cell Lymphoma. Front Immunol 2021; 12:755623. [PMID: 34975843 PMCID: PMC8716558 DOI: 10.3389/fimmu.2021.755623] [Citation(s) in RCA: 0] [Impact Index Per Article: 0] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Key Words] [MESH Headings] [Grants] [Track Full Text] [Download PDF] [Figures] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 08/09/2021] [Accepted: 11/24/2021] [Indexed: 11/16/2022] Open
Abstract
Absolute count of circulating monocytes has been proposed as an independent prognostic factor in diffuse large B-cell lymphoma (DLBCL). However, monocyte nomenclature includes various subsets with pro-, anti-inflammatory, or suppressive functions, and their clinical relevance in DLBCL has been poorly explored. Herein, we broadly assessed circulating monocyte heterogeneity in 91 DLBCL patients. Classical- (cMO, CD14pos CD16neg) and intermediate- (iMO, CD14pos CD16pos) monocytes accumulated in DLBCL peripheral blood and exhibited an inflammatory phenotype. On the opposite, nonclassical monocytes (ncMOSlanpos, CD14low CD16pos Slanneg and ncMOSlanneg, CD14low CD16pos, Slanneg) were decreased in peripheral blood. Tumor-conditioned monocytes presented similarities with ncMO phenotype from DLBCL and were prone to migrate in response to CCL5 and CXCL12, and presented similarities with DLBCL-infiltrated myeloid cells, as defined by mass cytometry. Finally, we demonstrated the adverse value of an accumulation of nonclassical monocytes in 2 independent cohorts of DLBCL.
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Affiliation(s)
- Simon Le Gallou
- Centre Hospitalier Universitaire de Rennes, Pôle Biologie, Rennes, France
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Unité Mixte de Recherche U1236, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France
| | - Faustine Lhomme
- Centre Hospitalier Universitaire de Rennes, Pôle Biologie, Rennes, France
- Department of Cell and Developmental Biology, Vanderbilt University School of Medicine, Nashville, TN, United States
| | - Jonathan M. Irish
- Department of Cell and Developmental Biology, Vanderbilt University School of Medicine, Nashville, TN, United States
- Department of Pathology, Microbiology and Immunology, Vanderbilt University School of Medicine, Nashville, TN, United States
| | - Anna Mingam
- Centre Hospitalier Universitaire de Rennes, Pôle Biologie, Rennes, France
| | - Celine Pangault
- Centre Hospitalier Universitaire de Rennes, Pôle Biologie, Rennes, France
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Unité Mixte de Recherche U1236, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France
| | - Celine Monvoisin
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Unité Mixte de Recherche U1236, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France
| | - Juliette Ferrant
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Unité Mixte de Recherche U1236, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France
| | - Imane Azzaoui
- Centre Hospitalier Universitaire de Rennes, Pôle Biologie, Rennes, France
| | - Delphine Rossille
- Centre Hospitalier Universitaire de Rennes, Pôle Biologie, Rennes, France
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Unité Mixte de Recherche U1236, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France
| | - Krimo Bouabdallah
- Centre Hospitalier Universitaire de Bordeaux, Service d’Hématologie Clinique, Bordeaux, France
| | - Gandhi Damaj
- Centre Hospitalier Universitaire de Caen, Service d’Hématologie Clinique, Caen, France
| | - Guillaume Cartron
- Centre Hospitalier Universitaire de Montpellier, Service d’Hématologie Clinique, Montpellier, France
| | - Pascal Godmer
- Centre Hospitalier de Bretagne Atlantique, Unité d’Hématologie Clinique, Vannes, France
| | - Steven Le Gouill
- Centre Hospitalier Universitaire de Nantes, Service d’Hématologie Clinique, Institut National de la Sante et de la Recherche Medicale, Centre de Recherche en Cancérologie et Immunologie Nantes Angers (INSERM CCRCINA) Nantes-Angers, NeXT Université de Nantes, Nantes, France
| | | | - Thierry Jo Molina
- Asistance Publique, Hopitaux de Paris (APHP), Necker, Service d’Anatomopathologie, Sorbonne Université, Paris, France
| | - Roch Houot
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Unité Mixte de Recherche U1236, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France
- Centre Hospitalier Universitaire de Rennes, Service d’Hématologie Clinique, Rennes, France
| | - Thierry Lamy
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Unité Mixte de Recherche U1236, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France
- Centre Hospitalier Universitaire de Rennes, Service d’Hématologie Clinique, Rennes, France
| | - Karin Tarte
- Centre Hospitalier Universitaire de Rennes, Pôle Biologie, Rennes, France
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Unité Mixte de Recherche U1236, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France
| | - Thierry Fest
- Centre Hospitalier Universitaire de Rennes, Pôle Biologie, Rennes, France
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Unité Mixte de Recherche U1236, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France
| | - Mikael Roussel
- Centre Hospitalier Universitaire de Rennes, Pôle Biologie, Rennes, France
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Unité Mixte de Recherche U1236, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France
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Sokal A, Barba-Spaeth G, Fernandez I, Broketa M, Azzaoui I, De La Selle A, Vandenberghe A, Fourati S, Roeser A, Crickx E, Michel M, Godeau B, Nguyen Y, Zarrouk V, Bruhns P, Rey F, Weill J, Reynaud C, Chappert P, Mahevas M. La vaccination par ARNm des sujets naïfs ou convalescents de la COVID-19 permet la génération de lymphocytes B mémoires capables de reconnaître et de neutraliser les variants du SARS-CoV-2. Rev Med Interne 2021. [PMCID: PMC8610708 DOI: 10.1016/j.revmed.2021.10.287] [Citation(s) in RCA: 0] [Impact Index Per Article: 0] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Abstract] [Track Full Text] [Download PDF] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Indexed: 11/17/2022]
Abstract
Introduction La mémoire immunitaire est un mécanisme qui protège les individus contre la réinfection. Cette stratégie de défense de l’organisme, qui est à la base du succès des vaccins, comprend la production d’anticorps protecteurs dans le sang ainsi que la formation de cellules à mémoire, capables de se réactiver rapidement en cellules productrices d’anticorps lors d’une nouvelle infection. Les vaccins à ARNm, codant pour la protéine Spike du SARS-CoV-2, ont été rapidement déployés dans le monde entier, avec une grande efficacité clinique. Déterminer les caractéristiques de la réponse lymphocytaire B mémoire générée par ces vaccins est d’une importance majeure, notamment dans le contexte de circulation de variants du SARS-CoV-2, porteurs de mutations dans la protéine Spike. Nous avons étudié la dynamique, l’évolution clonale, et l’affinité des cellules B à mémoire chez des patients vaccinés par le vaccin à ARNm, ainsi que leur capacité à reconnaître et à neutraliser les variants du SARS-CoV-2 dans deux cohortes longitudinales de patients, l’une infectée lors de la première vague (convalescents-vaccinés), et l’autre n’ayant pas été infectée (naïfs-vaccinés). Patients et méthodes Les patients infectés lors de la première vague de la pandémie ont été inclus dans l’étude MEMO-CoV2. Une partie de ces patients avec une forme sévère hospitalisée, ou une forme modérée ambulatoire ont reçu une dose de vaccin à ANR messager (BNT162b2) un an après l’infection. De façon parallèle, une cohorte de soignants, naïfs de toute infection et avec une sérologie négative, ont été vaccinés avec deux doses de vaccin à ARNm. Ces deux cohortes ont été suivies et analysées (Sérologie, Cytométrie en flux des cellules B) longitudinalement jusqu’à 2 mois après le boost vaccinal (première injection pour les convalescents, deuxième injection pour les naïfs). Les cellules B mémoires spécifiques du domaine RBD de la protéine Spike ont été isolées, triées et cultivées en cellule unique. Pour chaque cellule anti-RBD mémoire, nous avons séquencé la chaîne lourde de l’immunoglobuline et nous avons déterminé l’affinité par Biolayer-interferometry des anticorps produits contre des variants préoccupants(α, β, γ et δ). Nous avons aussi déterminé pour certains clones leur capacité à neutraliser le virus D614G (dominant lors de la première vague) et β in vitro. Résultats La vaccination induisait une réponse sérologique IgG anti-RBD robuste chez tous les patients analysés (n = 47). L’activité neutralisante du sérum contre le virus D614G était excellente pour tous les patients. Néanmoins, la neutralisation sérique des variants β et δ était très nettement meilleure chez les patients déjà infectés, suggérant que les plasmocytes mobilisés lors du boost vaccinal proviennent de cellules mémoires matures. L’analyse en cytométrie en flux, a mis en évidence une expansion du pool mémoires chez les patients convalescents à un niveau supérieur à celui des naïfs. L’analyse de plus de 2400 séquences de la chaîne lourde de l’immunoglobuline provenant de cellules B mémoires anti-RBD cultivés en cellule unique, a révélé que la réponse vaccinale anti-RBD mobilise des cellules peu mutées, donc nouvellement générées, chez les individus naïfs. À l’inverse les cellules mémoires mobilisées après le boost chez patients convalescents arboraient de nombreuses mutations somatiques, témoignant de la mobilisation de mémoires préexistantes. L’analyse du répertoire des cellules B mémoires montrait que sa diversité était conservée après la vaccination malgré son expansion. Nous avons ensuite analysé l’affinité de 382 anticorps monoclonaux issus cellules B mémoires mobilisées par le boost vaccinal, contre le RBD de différent variants (α, β, γ, δ, κ). L’affinité des anticorps contre la RBD sauvage était plus forte chez les convalescents que chez les naïfs et corrélait avec le nombre de mutations somatiques dans la chaine lourde de l’immunoglobuline, reflétant le processus de maturation d’affinité. Des clones de très haute affinité contre tous les RBD variants étaient détectés chez tous les individus testés, y compris chez les naïfs, ainsi que des clones neutralisant le variant β, qui a la plus grande capacité à échapper à la réponse immune. Conclusion Chez les patients convalescents, la vaccination amplifie un large répertoire de cellules B mémoires matures et génère des plasmocytes neutralisant les variants. Chez les individus naïfs, la vaccination induit un pool de mémoire contenant des clones neutralisants puissants contre tous les variants préoccupants actuels, dont bêta et delta. Nos résultats suggèrent qu’une troisième dose chez les sujets naïfs permettrait de différentier en plasmocytes les lymphocytes B mémoires de grande qualité générés par le schéma vaccinal initial et ainsi d’augmenter l’activité neutralisante des sérums contre les variants du SARS-CoV-2.
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Sokal A, Barba-Spaeth G, Fernández I, Broketa M, Azzaoui I, de La Selle A, Vandenberghe A, Fourati S, Roeser A, Meola A, Bouvier-Alias M, Crickx E, Languille L, Michel M, Godeau B, Gallien S, Melica G, Nguyen Y, Zarrouk V, Canoui-Poitrine F, Pirenne F, Mégret J, Pawlotsky JM, Fillatreau S, Bruhns P, Rey FA, Weill JC, Reynaud CA, Chappert P, Mahévas M. mRNA vaccination of naive and COVID-19-recovered individuals elicits potent memory B cells that recognize SARS-CoV-2 variants. Immunity 2021; 54:2893-2907.e5. [PMID: 34614412 PMCID: PMC8452492 DOI: 10.1016/j.immuni.2021.09.011] [Citation(s) in RCA: 87] [Impact Index Per Article: 29.0] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Key Words] [Track Full Text] [Download PDF] [Figures] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 06/17/2021] [Revised: 08/05/2021] [Accepted: 09/14/2021] [Indexed: 01/04/2023]
Abstract
In addition to serum immunoglobulins, memory B cell (MBC) generation against severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) is another layer of immune protection, but the quality of MBC responses in naive and coronavirus disease 2019 (COVID-19)-recovered individuals after vaccination remains ill defined. We studied longitudinal cohorts of naive and disease-recovered individuals for up to 2 months after SARS-CoV-2 mRNA vaccination. We assessed the quality of the memory response by analysis of antibody repertoires, affinity, and neutralization against variants of concern (VOCs) using unbiased cultures of 2,452 MBCs. Upon boosting, the MBC pool of recovered individuals expanded selectively, matured further, and harbored potent neutralizers against VOCs. Although naive individuals had weaker neutralizing serum responses, half of their RBD-specific MBCs displayed high affinity toward multiple VOCs, including delta (B.1.617.2), and one-third retained neutralizing potency against beta (B.1.351). Our data suggest that an additional challenge in naive vaccinees could recall such affinity-matured MBCs and allow them to respond efficiently to VOCs.
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Affiliation(s)
- Aurélien Sokal
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Université de Paris, Paris, France; Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Giovanna Barba-Spaeth
- Institut Pasteur, Université de Paris, Unité de Virologie Structurale, CNRS UMR 3569, Paris 75015, France
| | - Ignacio Fernández
- Institut Pasteur, Université de Paris, Unité de Virologie Structurale, CNRS UMR 3569, Paris 75015, France
| | - Matteo Broketa
- Institut Pasteur, Université de Paris, INSERM UMR 1222, Unit of Antibodies in Therapy and Pathology, Paris 75015, France; Sorbonne Université, Collège doctoral, Paris 75005, France
| | - Imane Azzaoui
- Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France; INSERM U955, Équipe 2, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Andréa de La Selle
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Université de Paris, Paris, France; Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Alexis Vandenberghe
- Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France; INSERM U955, Équipe 2, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Slim Fourati
- Département de Virologie, Bactériologie, Hygiène et Mycologie-Parasitologie, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Créteil, France; INSERM U955, Équipe 18, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Anais Roeser
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Université de Paris, Paris, France; Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Annalisa Meola
- Institut Pasteur, Université de Paris, Unité de Virologie Structurale, CNRS UMR 3569, Paris 75015, France
| | - Magali Bouvier-Alias
- Département de Virologie, Bactériologie, Hygiène et Mycologie-Parasitologie, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Créteil, France; INSERM U955, Équipe 18, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Etienne Crickx
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Université de Paris, Paris, France; Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Laetitia Languille
- Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Marc Michel
- Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Bertrand Godeau
- Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Sébastien Gallien
- Service de Maladies Infectieuses, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Giovanna Melica
- Service de Maladies Infectieuses, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Yann Nguyen
- Service de Médecine Interne, Hôpital Beaujon, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Université de Paris, Clichy, France
| | - Virginie Zarrouk
- Service de Médecine Interne, Hôpital Beaujon, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Université de Paris, Clichy, France
| | - Florence Canoui-Poitrine
- Département de Santé Publique, Unité de Recherche Clinique (URC), CEpiA (Clinical Epidemiology and Ageing), EA 7376, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - France Pirenne
- INSERM U955, Équipe 2, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France; Etablissement Français du Sang (EFS) Ile de France, Créteil, France
| | - Jérôme Mégret
- Plateforme de Cytométrie en Flux, Structure Fédérative de Recherche Necker, INSERM US24-CNRS UMS3633, Paris, France
| | - Jean-Michel Pawlotsky
- Département de Virologie, Bactériologie, Hygiène et Mycologie-Parasitologie, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Créteil, France; INSERM U955, Équipe 18, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Simon Fillatreau
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Université de Paris, Paris, France
| | - Pierre Bruhns
- Institut Pasteur, Université de Paris, INSERM UMR 1222, Unit of Antibodies in Therapy and Pathology, Paris 75015, France
| | - Felix A Rey
- Institut Pasteur, Université de Paris, Unité de Virologie Structurale, CNRS UMR 3569, Paris 75015, France
| | - Jean-Claude Weill
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Université de Paris, Paris, France.
| | - Claude-Agnès Reynaud
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Université de Paris, Paris, France.
| | - Pascal Chappert
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Université de Paris, Paris, France; Inovarion, Paris, France.
| | - Matthieu Mahévas
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Université de Paris, Paris, France; Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France; INSERM U955, Équipe 2, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France.
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Mahévas M, Azzaoui I, Crickx E, Canoui-Poitrine F, Gobert D, Languille L, Limal N, Guillaud C, Croisille L, Jeljeli M, Batteux F, Baloul S, Fain O, Pirenne F, Weill JC, Reynaud CA, Godeau B, Michel M. Efficacy, safety and immunological profile of combining rituximab with belimumab for adults with persistent or chronic immune thrombocytopenia: results from a prospective phase 2b trial. Haematologica 2021; 106:2449-2457. [PMID: 32817288 PMCID: PMC8409028 DOI: 10.3324/haematol.2020.259481] [Citation(s) in RCA: 28] [Impact Index Per Article: 9.3] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Track Full Text] [Download PDF] [Figures] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 05/18/2020] [Indexed: 12/24/2022] Open
Abstract
B-cell activating factor may be involved in the failure of B-cell depleting therapy with rituximab in immune thrombocytopenia (ITP) by promoting the emergence of splenic long-lived plasma cells. From results obtained in mouse models, we hypothesized that combining rituximab with sequential injections of belimumab could increase the rate of response at one year in patients with persistent or chronic ITP by preventing the emergence of these long-lived plasma cells. The study was a single-center, single arm, prospective phase 2b trial (RITUX-PLUS, NCT03154385) investigating the safety and efficacy of rituximab given at a fixed dose of 1,000 mg, two weeks apart, combined with five infusions of belimumab, 10 mg/kg at week 0 (W0)+2 days, W2+2 days, W4, W8 and W12 for adults with primary persistent or chronic ITP. The primary endpoint was the total number of patients achieving an overall response (complete response + response) at W52 according to a standard definition. In total, 15 non-splenectomized adults, nine (60%) with persistent IPT and six (40%) with chronic ITP, were included. No severe adverse event, infection, or severe hypogammaglobulinemia was observed. Thirteen patients achieved an initial overall response. At W52, 12 (80%) patients achieved an overall response, including ten (66.7%) with complete response. When compared with a cohort of patients receiving rituximab alone, the kinetics of B-cell repopulation appeared similar, but the number of circulating T follicular helper cells was significantly decreased with belimumab combination therapy. Combining rituximab and belimumab seems a promising strategy in ITP, with high efficacy and acceptable safety.
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Affiliation(s)
- Matthieu Mahévas
- Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Université Paris Est Creteil, Creteil, France
| | | | - Etienne Crickx
- Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Université Paris Est Creteil, Creteil, France
| | - Florence Canoui-Poitrine
- University Paris-Est, Paris Est Creteil University, CEpiA, Henri-Mondor Hospital, Creteil, France
| | | | - Laetitia Languille
- Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Université Paris Est Creteil, Creteil, France
| | - Nicolas Limal
- Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Université Paris Est Creteil, Creteil, France
| | - Constance Guillaud
- Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Université Paris Est Creteil, Creteil, France
| | - Laure Croisille
- Service d'immunologie plaquettaire, Hopital Henri Mondor, Creteil, France
| | - Mohamed Jeljeli
- Service d'Immunologie biologique, Hopital Cochin, Institut Cochin, Paris, France
| | - Fréderic Batteux
- Service d'Immunologie biologique, Hopital Cochin, Institut Cochin, Paris, France
| | - Samia Baloul
- University Paris-Est, Paris Est Creteil University, CEpiA, Henri-Mondor Hospital, Creteil, France
| | - Olivier Fain
- Sorbonne Université, Service de Medecine Interne, Hopital Saint-Antoine, Paris, France
| | | | - Jean-Claude Weill
- Institut Necker Enfants Malades, Université Paris Descartes, Paris, France
| | | | - Bertrand Godeau
- Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Université Paris Est Creteil, Creteil, France
| | - Marc Michel
- Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Université Paris Est Creteil, Creteil, France
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Crickx E, Chappert P, Sokal A, Weller S, Azzaoui I, Vandenberghe A, Bonnard G, Rossi G, Fadeev T, Storck S, Fadlallah J, Meignin V, Rivière E, Audia S, Godeau B, Michel M, Weill JC, Reynaud CA, Mahévas M. Rituximab-resistant splenic memory B cells and newly engaged naive B cells fuel relapses in patients with immune thrombocytopenia. Sci Transl Med 2021; 13:13/589/eabc3961. [PMID: 33853929 DOI: 10.1126/scitranslmed.abc3961] [Citation(s) in RCA: 29] [Impact Index Per Article: 9.7] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 04/23/2020] [Revised: 10/29/2020] [Accepted: 03/22/2021] [Indexed: 01/19/2023]
Abstract
Rituximab (RTX), an antibody targeting CD20, is widely used as a first-line therapeutic strategy in B cell-mediated autoimmune diseases. However, a large proportion of patients either do not respond to the treatment or relapse during B cell reconstitution. Here, we characterize the cellular basis responsible for disease relapse in secondary lymphoid organs in humans, taking advantage of the opportunity offered by therapeutic splenectomy in patients with relapsing immune thrombocytopenia. By analyzing the B and plasma cell immunoglobulin gene repertoire at bulk and antigen-specific single-cell level, we demonstrate that relapses are associated with two responses coexisting in germinal centers and involving preexisting mutated memory B cells that survived RTX treatment and naive B cells generated upon reconstitution of the B cell compartment. To identify distinctive characteristics of the memory B cells that escaped RTX-mediated depletion, we analyzed RTX refractory patients who did not respond to treatment at the time of B cell depletion. We identified, by single-cell RNA sequencing (scRNA-seq) analysis, a population of quiescent splenic memory B cells that present a unique, yet reversible, RTX-shaped phenotype characterized by down-modulation of B cell-specific factors and expression of prosurvival genes. Our results clearly demonstrate that these RTX-resistant autoreactive memory B cells reactivate as RTX is cleared and give rise to plasma cells and further germinal center reactions. Their continued surface expression of CD19 makes them efficient targets for current anti-CD19 therapies. This study thus identifies a pathogenic contributor to autoimmune diseases that can be targeted by available therapeutic agents.
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Affiliation(s)
- Etienne Crickx
- Institut Necker-Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMS8253, Université Paris Descartes, Sorbonne Paris Cité, 75993 Paris Cedex 14, France.,Service de Médecine Interne, Centre national de référence des cytopénies auto-immunes de l'adulte, Hôpital Henri Mondor, Assistance Publique Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris Est Créteil, 94000 Créteil, France
| | - Pascal Chappert
- Institut Necker-Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMS8253, Université Paris Descartes, Sorbonne Paris Cité, 75993 Paris Cedex 14, France.,Inovarion, 75005 Paris, France
| | - Aurélien Sokal
- Institut Necker-Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMS8253, Université Paris Descartes, Sorbonne Paris Cité, 75993 Paris Cedex 14, France
| | - Sandra Weller
- Institut Necker-Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMS8253, Université Paris Descartes, Sorbonne Paris Cité, 75993 Paris Cedex 14, France
| | - Imane Azzaoui
- Service de Médecine Interne, Centre national de référence des cytopénies auto-immunes de l'adulte, Hôpital Henri Mondor, Assistance Publique Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris Est Créteil, 94000 Créteil, France.,INSERM U955, Université Paris Est Créteil (UPEC), 94000 Créteil, France
| | - Alexis Vandenberghe
- Service de Médecine Interne, Centre national de référence des cytopénies auto-immunes de l'adulte, Hôpital Henri Mondor, Assistance Publique Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris Est Créteil, 94000 Créteil, France.,INSERM U955, Université Paris Est Créteil (UPEC), 94000 Créteil, France
| | - Guillaume Bonnard
- INSERM U955, Université Paris Est Créteil (UPEC), 94000 Créteil, France
| | - Geoffrey Rossi
- Institut Necker-Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMS8253, Université Paris Descartes, Sorbonne Paris Cité, 75993 Paris Cedex 14, France
| | - Tatiana Fadeev
- Institut Necker-Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMS8253, Université Paris Descartes, Sorbonne Paris Cité, 75993 Paris Cedex 14, France
| | - Sébastien Storck
- Institut Necker-Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMS8253, Université Paris Descartes, Sorbonne Paris Cité, 75993 Paris Cedex 14, France
| | - Jehane Fadlallah
- Service d'immunologie clinique, Hôpital Saint-Louis, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, Université Paris Diderot, Sorbonne Paris Cité, 75010 Paris, France
| | - Véronique Meignin
- Service d'anatomopathologie, Hôpital Saint-Louis (AP-HP), 75010 Paris, France
| | - Etienne Rivière
- Service de médecine interne, Hôpital Haut-Lévêque, 33604 Pessac, France
| | - Sylvain Audia
- Service de médecine interne, Hôpital du Bocage, 21000 Dijon, France
| | - Bertrand Godeau
- Service de Médecine Interne, Centre national de référence des cytopénies auto-immunes de l'adulte, Hôpital Henri Mondor, Assistance Publique Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris Est Créteil, 94000 Créteil, France
| | - Marc Michel
- Service de Médecine Interne, Centre national de référence des cytopénies auto-immunes de l'adulte, Hôpital Henri Mondor, Assistance Publique Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris Est Créteil, 94000 Créteil, France
| | - Jean-Claude Weill
- Institut Necker-Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMS8253, Université Paris Descartes, Sorbonne Paris Cité, 75993 Paris Cedex 14, France
| | - Claude-Agnès Reynaud
- Institut Necker-Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMS8253, Université Paris Descartes, Sorbonne Paris Cité, 75993 Paris Cedex 14, France
| | - Matthieu Mahévas
- Institut Necker-Enfants Malades, INSERM U1151/CNRS UMS8253, Université Paris Descartes, Sorbonne Paris Cité, 75993 Paris Cedex 14, France. .,Service de Médecine Interne, Centre national de référence des cytopénies auto-immunes de l'adulte, Hôpital Henri Mondor, Assistance Publique Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris Est Créteil, 94000 Créteil, France.,INSERM U955, Université Paris Est Créteil (UPEC), 94000 Créteil, France
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Oniszczuk J, Beldi-Ferchiou A, Audureau E, Azzaoui I, Molinier-Frenkel V, Frontera V, Karras A, Moktefi A, Pillebout E, Zaidan M, El Karoui K, Delfau-Larue MH, Hénique C, Ollero M, Sahali D, Mahévas M, Audard V. Circulating plasmablasts and high level of BAFF are hallmarks of minimal change nephrotic syndrome in adults. Nephrol Dial Transplant 2021; 36:609-617. [PMID: 33241414 DOI: 10.1093/ndt/gfaa279] [Citation(s) in RCA: 16] [Impact Index Per Article: 5.3] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Key Words] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 05/04/2020] [Indexed: 02/06/2023] Open
Abstract
BACKGROUND The recent success achieved with the use of B cell-depleting agents in some patients with minimal change nephrotic syndrome (MCNS) suggests an unexpected role for B lymphocytes in the pathogenesis of this immune-mediated glomerular disease. Nevertheless, no extensive B-cell phenotyping analysis has ever been performed in untreated adult patients soon after MCNS diagnosis. METHODS We investigated the distribution of the different B-cell subpopulations in 22 untreated adult patients with biopsy-proven MCNS [MCNS relapse (MCNS-Rel)]. We compared these data with those for 24 healthy controls, 13 MCNS patients in remission (with no specific treatment) and 19 patients with idiopathic membranous nephropathy (IMN). RESULTS Patients with MCNS-Rel or IMN had higher proteinuria and lower serum albumin and gammaglobulin levels (P < 0.0001 for all comparisons) than MCNS patients in remission. Plasmablasts were the only B-cell subsets present at significantly higher levels in MCNS-Rel patients than in the patients of the other three groups (P < 0.05 for all comparisons). The lower albumin levels and higher proteinuria levels were positively correlated with the percentage of circulating plasmablasts (Spearman test's ρ = -0.54, P = 0.01 and ρ = 0.65, P = 0.002, respectively). Similarly, the increase of immunoglobulin M (IgM) and the decrease of IgG levels were significantly associated with the percentage of plasmablasts in MCNS-Rel patients (Spearman's ρ = 0.36, P = 0.01 and Spearman's ρ = -0.60, P = 0.01, respectively). Increased production of interleukin (IL)-21, IL-6 and B-cell activating factor (BAFF) in the serum of MCNS-Rel patients was found significantly correlated with the percentage of plasmablasts (ρ = 0.72, P = 0.0002, ρ = 0.49, P = 0.04 and ρ = 0.62, P = 0.009, respectively). CONCLUSIONS An increase in the proportion of circulating plasmablasts seems to be a hallmark of untreated MCNS in adult patients. Further studies are required to more precisely determine the phenotype and functions of these cells.
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Affiliation(s)
- Julie Oniszczuk
- Assistance Publique des Hôpitaux de Paris (AP-HP), Hôpitaux Universitaires Henri Mondor, Service de Néphrologie et Transplantation, Centre de Référence Maladie Rare « Syndrome Néphrotique Idiopathique », Fédération Hospitalo-Universitaire « Innovative Therapy for Immune Disorders », Créteil, France.,Univ Paris Est Créteil, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM) U955, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Equipe 21, Créteil, France
| | - Asma Beldi-Ferchiou
- AP-HP, Hôpitaux Universitaires Henri Mondor, Département d'Hématologie et Immunologie Biologiques, Créteil, France.,Univ Paris Est Créteil, INSERM U955, IMRB, Equipe Immunorégulation et Biothérapie, Créteil, France
| | - Etienne Audureau
- AP-HP, Hôpitaux Universitaires Henri Mondor, Service de Santé Publique, Unité de Recherche Clinique, Université Paris Est Créteil, INSERM U955, IMRB, Equipe CEPIA, Créteil, France
| | - Imane Azzaoui
- Univ Paris Est Créteil, INSERM U955, IMRB, Equipe 2, Créteil, France
| | - Valérie Molinier-Frenkel
- AP-HP, Hôpitaux Universitaires Henri Mondor, Département d'Hématologie et Immunologie Biologiques, Créteil, France.,Univ Paris Est Créteil, INSERM U955, IMRB, Equipe Immunorégulation et Biothérapie, Créteil, France
| | - Vincent Frontera
- Univ Paris Est Créteil, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM) U955, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Equipe 21, Créteil, France
| | - Alexandre Karras
- AP-HP, Hôpital Européen Georges Pompidou, Service de Néphrologie, Paris, France.,Faculté de Médecine Paris-Descartes, Université de Paris, Paris, France
| | - Anissa Moktefi
- Univ Paris Est Créteil, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM) U955, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Equipe 21, Créteil, France.,AP-HP, Hôpitaux Universitaires Henri Mondor, Département de Pathologie, Créteil, France
| | - Evangeline Pillebout
- Service de Néphrologie et Transplantation, AP-HP, Hôpital Saint Louis, Paris, France
| | - Mohamad Zaidan
- AP-HP, Hôpitaux Universitaires du Kremlin Bicêtre, Service de Néphrologie-Dialyse-Transplantation, Le Kremlin-Bicêtre, France
| | - Khalil El Karoui
- Assistance Publique des Hôpitaux de Paris (AP-HP), Hôpitaux Universitaires Henri Mondor, Service de Néphrologie et Transplantation, Centre de Référence Maladie Rare « Syndrome Néphrotique Idiopathique », Fédération Hospitalo-Universitaire « Innovative Therapy for Immune Disorders », Créteil, France.,Univ Paris Est Créteil, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM) U955, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Equipe 21, Créteil, France
| | - Marie-Hélène Delfau-Larue
- AP-HP, Hôpitaux Universitaires Henri Mondor, Département d'Hématologie et Immunologie Biologiques, Créteil, France.,Univ Paris Est Créteil, INSERM U955, IMRB, Equipe 9, Créteil, France
| | - Carole Hénique
- Univ Paris Est Créteil, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM) U955, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Equipe 21, Créteil, France
| | - Mario Ollero
- Univ Paris Est Créteil, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM) U955, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Equipe 21, Créteil, France
| | - Dil Sahali
- Assistance Publique des Hôpitaux de Paris (AP-HP), Hôpitaux Universitaires Henri Mondor, Service de Néphrologie et Transplantation, Centre de Référence Maladie Rare « Syndrome Néphrotique Idiopathique », Fédération Hospitalo-Universitaire « Innovative Therapy for Immune Disorders », Créteil, France.,Univ Paris Est Créteil, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM) U955, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Equipe 21, Créteil, France
| | - Matthieu Mahévas
- Univ Paris Est Créteil, INSERM U955, IMRB, Equipe 2, Créteil, France.,AP-HP, Hôpitaux Universitaires Henri Mondor, Service de Médecine interne, Centre de Référence Maladie Rare « Cytopénies Auto-immunes », Créteil, France
| | - Vincent Audard
- Assistance Publique des Hôpitaux de Paris (AP-HP), Hôpitaux Universitaires Henri Mondor, Service de Néphrologie et Transplantation, Centre de Référence Maladie Rare « Syndrome Néphrotique Idiopathique », Fédération Hospitalo-Universitaire « Innovative Therapy for Immune Disorders », Créteil, France.,Univ Paris Est Créteil, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM) U955, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Equipe 21, Créteil, France
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Sokal A, Chappert P, Barba-Spaeth G, Roeser A, Fourati S, Azzaoui I, Vandenberghe A, Fernandez I, Crickx E, Beldi-Ferchiou A, Hue S, Michel M, Godeau B, Noizat-Pirenne F, Ménager M, Fillatreau S, Rey F, Weill J, Reynaud C, Mahevas M. Maturation et persistance de la réponse lymphocytaire B mémoire anti-SARS-CoV-2. Rev Med Interne 2021. [PMCID: PMC8192033 DOI: 10.1016/j.revmed.2021.03.258] [Citation(s) in RCA: 0] [Impact Index Per Article: 0] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Track Full Text] [Download PDF] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Indexed: 11/27/2022]
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Sokal A, Chappert P, Barba-Spaeth G, Roeser A, Fourati S, Azzaoui I, Vandenberghe A, Fernandez I, Meola A, Bouvier-Alias M, Crickx E, Beldi-Ferchiou A, Hue S, Languille L, Michel M, Baloul S, Noizat-Pirenne F, Luka M, Mégret J, Ménager M, Pawlotsky JM, Fillatreau S, Rey FA, Weill JC, Reynaud CA, Mahévas M. Maturation and persistence of the anti-SARS-CoV-2 memory B cell response. Cell 2021; 184:1201-1213.e14. [PMID: 33571429 PMCID: PMC7994111 DOI: 10.1016/j.cell.2021.01.050] [Citation(s) in RCA: 215] [Impact Index Per Article: 71.7] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Key Words] [Download PDF] [Figures] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 11/18/2020] [Revised: 01/09/2021] [Accepted: 01/26/2021] [Indexed: 12/15/2022]
Abstract
Memory B cells play a fundamental role in host defenses against viruses, but to date, their role has been relatively unsettled in the context of SARS-CoV-2. We report here a longitudinal single-cell and repertoire profiling of the B cell response up to 6 months in mild and severe COVID-19 patients. Distinct SARS-CoV-2 spike-specific activated B cell clones fueled an early antibody-secreting cell burst as well as a durable synchronous germinal center response. While highly mutated memory B cells, including pre-existing cross-reactive seasonal Betacoronavirus-specific clones, were recruited early in the response, neutralizing SARS-CoV-2 RBD-specific clones accumulated with time and largely contributed to the late, remarkably stable, memory B cell pool. Highlighting germinal center maturation, these cells displayed clear accumulation of somatic mutations in their variable region genes over time. Overall, these findings demonstrate that an antigen-driven activation persisted and matured up to 6 months after SARS-CoV-2 infection and may provide long-term protection.
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Affiliation(s)
- Aurélien Sokal
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Université de Paris, Paris, France; Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Pascal Chappert
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Université de Paris, Paris, France; Inovarion, Paris, France
| | | | - Anais Roeser
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Université de Paris, Paris, France; Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Slim Fourati
- Département de Virologie, Bactériologie, Hygiène et Mycologie-Parasitologie, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Créteil, France; INSERM U955, équipe 18, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Imane Azzaoui
- Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France; INSERM U955, équipe 2, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Alexis Vandenberghe
- Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France; INSERM U955, équipe 2, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Ignacio Fernandez
- Institut Pasteur, Unité de Virologie Structurale, CNRS UMR 3569, Paris, France
| | - Annalisa Meola
- Institut Pasteur, Unité de Virologie Structurale, CNRS UMR 3569, Paris, France
| | - Magali Bouvier-Alias
- Département de Virologie, Bactériologie, Hygiène et Mycologie-Parasitologie, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Créteil, France; INSERM U955, équipe 18, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Etienne Crickx
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Université de Paris, Paris, France; Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Asma Beldi-Ferchiou
- Département Immunologie-Hématologie, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), 94000 Créteil, France; INSERM U955, équipe immunorégulation et biothérapie (I-BIOT), Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Sophie Hue
- Département Immunologie-Hématologie, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), 94000 Créteil, France; Institut de Recherche Vaccinale (VRI), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Faculté de Médecine, Créteil, France; INSERM U955, équipe 16, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Laetitia Languille
- Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Marc Michel
- Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Samia Baloul
- Département de Santé Publique, Unité de Recherche Clinique (URC), CEpiA (Clinical Epidemiology and Ageing), EA 7376, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - France Noizat-Pirenne
- Etablissement Français du Sang, INSERM U955, Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Marine Luka
- Réponses inflammatoires et réseaux transcriptomiques dans les maladies, Institut Imagine, INSERM UMR1163, ATIP-Avenir Team, Université de Paris, Paris, France; Labtech Single-cell@Imagine, Institut Imagine, INSERM UMR 1163, Paris, France
| | - Jérôme Mégret
- Plateforme de Cytométrie en Flux, Structure Fédérative de Recherche Necker, INSERM US24-CNRS UMS3633, Paris, France
| | - Mickaël Ménager
- Réponses inflammatoires et réseaux transcriptomiques dans les maladies, Institut Imagine, INSERM UMR1163, ATIP-Avenir Team, Université de Paris, Paris, France; Labtech Single-cell@Imagine, Institut Imagine, INSERM UMR 1163, Paris, France
| | - Jean-Michel Pawlotsky
- Département de Virologie, Bactériologie, Hygiène et Mycologie-Parasitologie, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Créteil, France; INSERM U955, équipe 18, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France
| | - Simon Fillatreau
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Université de Paris, Paris, France
| | - Felix A Rey
- Institut Pasteur, Unité de Virologie Structurale, CNRS UMR 3569, Paris, France
| | - Jean-Claude Weill
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Université de Paris, Paris, France.
| | - Claude-Agnès Reynaud
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Université de Paris, Paris, France.
| | - Matthieu Mahévas
- Institut Necker Enfants Malades (INEM), INSERM U1151/CNRS UMS 8253, Université de Paris, Paris, France; Service de Médecine Interne, Centre Hospitalier Universitaire Henri-Mondor, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (AP-HP), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France; INSERM U955, équipe 2, Institut Mondor de Recherche Biomédicale (IMRB), Université Paris-Est Créteil (UPEC), Créteil, France.
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Mahevas M, Azzaoui I, Crickx E, Canoui-Poitrine F, Gobert D, Languille L, Limal N, Croisille L, Batteux F, Baloul S, Fain O, Noizat-Pirenne F, Weill J, Reynaud C, Godeau B, Michel M. Efficacité et tolérance du traitement combinant rituximab et belimumab au cours de la thrombopénie immunologique persistante et chronique de l’adulte : résultats d’un essai de phase IIb. Rev Med Interne 2020. [DOI: 10.1016/j.revmed.2020.10.121] [Citation(s) in RCA: 0] [Impact Index Per Article: 0] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Indexed: 11/30/2022]
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Crickx E, Sokal A, Chappert P, Weller S, Azzaoui I, Vandenberghe A, Bonnard G, Geoffrey R, Fadeev T, Storck S, Fadlallah J, Meignin V, Riviere E, Godeau B, Michel M, Weill J, Reynaud C, Mahevas M. Un réservoir de lymphocytes B mémoires ayant résisté au rituximab participe aux rechutes à distance du traitement au cours de la thrombopénie immunologique de l’adulte. Rev Med Interne 2020. [DOI: 10.1016/j.revmed.2020.10.074] [Citation(s) in RCA: 0] [Impact Index Per Article: 0] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Indexed: 11/25/2022]
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Uhel F, Azzaoui I, Le Gallou S, Fest T, Tarte K, Roussel M. Early-stage myeloid-derived suppressor cell count: Basophil exclusion matters. J Allergy Clin Immunol 2019; 144:1125-1127. [PMID: 31279012 DOI: 10.1016/j.jaci.2019.06.027] [Citation(s) in RCA: 6] [Impact Index Per Article: 1.2] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 12/27/2018] [Revised: 05/27/2019] [Accepted: 06/14/2019] [Indexed: 01/10/2023]
Affiliation(s)
- Fabrice Uhel
- CHU de Rennes, Maladies Infectieuses et Réanimation Médicale, Rennes, France; INSERM, Rennes, France
| | - Imane Azzaoui
- INSERM, Rennes, France; Centre Hospitalier Universitaire de Rennes, Pôle Biologie, Rennes, France
| | - Simon Le Gallou
- INSERM, Rennes, France; Centre Hospitalier Universitaire de Rennes, Pôle Biologie, Rennes, France
| | - Thierry Fest
- INSERM, Rennes, France; Centre Hospitalier Universitaire de Rennes, Pôle Biologie, Rennes, France
| | - Karin Tarte
- INSERM, Rennes, France; Centre Hospitalier Universitaire de Rennes, Pôle Biologie, Rennes, France
| | - Mikael Roussel
- INSERM, Rennes, France; Centre Hospitalier Universitaire de Rennes, Pôle Biologie, Rennes, France.
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Uhel F, Azzaoui I, Grégoire M, Pangault C, Dulong J, Tadié JM, Gacouin A, Camus C, Cynober L, Fest T, Le Tulzo Y, Roussel M, Tarte K. Early Expansion of Circulating Granulocytic Myeloid-derived Suppressor Cells Predicts Development of Nosocomial Infections in Patients with Sepsis. Am J Respir Crit Care Med 2017; 196:315-327. [PMID: 28146645 DOI: 10.1164/rccm.201606-1143oc] [Citation(s) in RCA: 150] [Impact Index Per Article: 21.4] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Key Words] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Indexed: 12/31/2022] Open
Abstract
RATIONALE Sepsis induces a sustained immune dysfunction responsible for poor outcome and nosocomial infections. Myeloid-derived suppressor cells (MDSCs) described in cancer and inflammatory processes may be involved in sepsis-induced immune suppression, but their clinical impact remains poorly defined. OBJECTIVES To clarify phenotype, suppressive activity, origin, and clinical impact of MDSCs in patients with sepsis. METHODS Peripheral blood transcriptomic analysis was performed on 29 patients with sepsis and 15 healthy donors. A second cohort of 94 consecutive patients with sepsis, 11 severity-matched intensive care patients, and 67 healthy donors was prospectively enrolled for flow cytometry and functional experiments. MEASUREMENTS AND MAIN RESULTS Genes involved in MDSC suppressive functions, including S100A12, S100A9, MMP8, and ARG1, were up-regulated in the peripheral blood of patients with sepsis. CD14posHLA-DRlow/neg monocytic (M)-MDSCs were expanded in intensive care unit patients with and without sepsis and CD14negCD15pos low-density granulocytes/granulocytic (G)-MDSCs were more specifically expanded in patients with sepsis (P < 0.001). Plasma levels of MDSC mediators S100A8/A9, S100A12, and arginase 1 were significantly increased. In vitro, CD14pos- and CD15pos-cell depletion increased T-cell proliferation in patients with sepsis. G-MDSCs, made of immature and mature granulocytes expressing high levels of degranulation markers, were specifically responsible for arginase 1 activity. High initial levels of G-MDSCs, arginase 1, and S100A12 but not M-MDSCs were associated with subsequent occurrence of nosocomial infections. CONCLUSIONS M-MDSCs and G-MDSCs strongly contribute to T-cell dysfunction in patients with sepsis. More specifically, G-MDSCs producing arginase 1 are associated with a higher incidence of nosocomial infections and seem to be major actors of sepsis-induced immune suppression.
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Affiliation(s)
- Fabrice Uhel
- 1 Centre Hospitalier Universitaire Rennes, Maladies Infectieuses et Réanimation Médicale, Rennes, France.,2 Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Centre d'Investigation Clinique-1414, and.,3 Unité Mixte de Recherche U917, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France.,4 Centre Hospitalier Universitaire Rennes, Laboratoire Suivi Immunologique des Thérapeutiques Innovantes, Rennes, France
| | - Imane Azzaoui
- 3 Unité Mixte de Recherche U917, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France.,4 Centre Hospitalier Universitaire Rennes, Laboratoire Suivi Immunologique des Thérapeutiques Innovantes, Rennes, France
| | - Murielle Grégoire
- 3 Unité Mixte de Recherche U917, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France.,4 Centre Hospitalier Universitaire Rennes, Laboratoire Suivi Immunologique des Thérapeutiques Innovantes, Rennes, France
| | - Céline Pangault
- 3 Unité Mixte de Recherche U917, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France.,4 Centre Hospitalier Universitaire Rennes, Laboratoire Suivi Immunologique des Thérapeutiques Innovantes, Rennes, France
| | - Joelle Dulong
- 3 Unité Mixte de Recherche U917, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France.,4 Centre Hospitalier Universitaire Rennes, Laboratoire Suivi Immunologique des Thérapeutiques Innovantes, Rennes, France
| | - Jean-Marc Tadié
- 1 Centre Hospitalier Universitaire Rennes, Maladies Infectieuses et Réanimation Médicale, Rennes, France.,2 Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Centre d'Investigation Clinique-1414, and.,3 Unité Mixte de Recherche U917, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France.,4 Centre Hospitalier Universitaire Rennes, Laboratoire Suivi Immunologique des Thérapeutiques Innovantes, Rennes, France
| | - Arnaud Gacouin
- 1 Centre Hospitalier Universitaire Rennes, Maladies Infectieuses et Réanimation Médicale, Rennes, France.,2 Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Centre d'Investigation Clinique-1414, and
| | - Christophe Camus
- 1 Centre Hospitalier Universitaire Rennes, Maladies Infectieuses et Réanimation Médicale, Rennes, France.,2 Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Centre d'Investigation Clinique-1414, and
| | - Luc Cynober
- 5 Assistance Publique-Hôpitaux de Paris Hôpital Cochin, Service de Biochimie, and.,6 Département de Nutrition Equipe d'Accueil 4466, Faculté de Pharmacie, Université Paris Descartes, Paris, France
| | - Thierry Fest
- 3 Unité Mixte de Recherche U917, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France.,4 Centre Hospitalier Universitaire Rennes, Laboratoire Suivi Immunologique des Thérapeutiques Innovantes, Rennes, France
| | - Yves Le Tulzo
- 1 Centre Hospitalier Universitaire Rennes, Maladies Infectieuses et Réanimation Médicale, Rennes, France.,2 Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Centre d'Investigation Clinique-1414, and.,3 Unité Mixte de Recherche U917, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France.,4 Centre Hospitalier Universitaire Rennes, Laboratoire Suivi Immunologique des Thérapeutiques Innovantes, Rennes, France
| | - Mikael Roussel
- 3 Unité Mixte de Recherche U917, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France.,4 Centre Hospitalier Universitaire Rennes, Laboratoire Suivi Immunologique des Thérapeutiques Innovantes, Rennes, France
| | - Karin Tarte
- 3 Unité Mixte de Recherche U917, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Université Rennes 1, Etablissement Français du Sang Bretagne, Rennes, France.,4 Centre Hospitalier Universitaire Rennes, Laboratoire Suivi Immunologique des Thérapeutiques Innovantes, Rennes, France
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Gacouin A, Roussel M, Le Priol J, Azzaoui I, Uhel F, Fest T, Le Tulzo Y, Tadie JM. Acute alcohol exposure has an independent impact on C-reactive protein levels, neutrophil CD64 expression, and subsets of circulating white blood cells differentiated by flow cytometry in nontrauma patients. Shock 2015; 42:192-8. [PMID: 24827394 DOI: 10.1097/shk.0000000000000195] [Citation(s) in RCA: 12] [Impact Index Per Article: 1.3] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Indexed: 12/11/2022]
Abstract
Acute and massive alcohol exposure (blood alcohol concentration of ≥1 g/L) is a common way to consume alcohol. In a prospective study performed in critically ill nontrauma patients, we compared C-reactive protein (CRP) values, circulating subsets of white blood cells, and neutrophil CD64 indexes recorded at admission to the intensive care unit between abstinent or moderate drinkers (n = 173), patients with acute or chronic alcohol exposure (n = 32), and patients with acute exposure but not chronically exposed to alcohol (n = 27). Values for CRP (P < 0.001), circulating neutrophils (P < 0.001), and neutrophil CD64 indexes (P < 0.001) were significantly lower in patients acutely exposed compared with the other patients, whereas values for B lymphocytes (P < 0.001) and cytotoxic (P < 0.001) and noncytotoxic T lymphocytes (P < 0.001) were significantly higher. After multiple regression analysis, alcohol exposure remained independently associated with values of CRP, neutrophils CD4 indexes, cytotoxic and noncytotoxic T lymphocytes, and CD16-negative and -positive monocytes. These results were not affected by the presence or absence of infection at admission. Our results suggest that in nontrauma critically ill patients, acute alcohol exposure diminishes inflammation and increases numbers of circulating B and T lymphocytes.
Collapse
Affiliation(s)
- Arnaud Gacouin
- *CHU Rennes, Maladies Infectieuses et Réanimation Médicale; †Inserm-CIC; ‡Univ Rennes 1, Faculté de Médecine, Biosit; §CHU Rennes, Laboratoire d'Hématologie; and ∥Inserm U 917, Rennes, France
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Plé C, Fan Y, Ait Yahia S, Vorng H, Everaere L, Chenivesse C, Balsamelli J, Azzaoui I, de Nadai P, Wallaert B, Lazennec G, Tsicopoulos A. Polycyclic aromatic hydrocarbons reciprocally regulate IL-22 and IL-17 cytokines in peripheral blood mononuclear cells from both healthy and asthmatic subjects. PLoS One 2015; 10:e0122372. [PMID: 25860963 PMCID: PMC4393221 DOI: 10.1371/journal.pone.0122372] [Citation(s) in RCA: 41] [Impact Index Per Article: 4.6] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [MESH Headings] [Track Full Text] [Download PDF] [Figures] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 12/22/2014] [Accepted: 02/16/2015] [Indexed: 01/12/2023] Open
Abstract
Pollution, including polycyclic aromatic hydrocarbons (PAH), may contribute to increased prevalence of asthma. PAH can bind to the Aryl hydrocarbon Receptor (AhR), a transcription factor involved in Th17/Th22 type polarization. These cells produce IL17A and IL-22, which allow neutrophil recruitment, airway smooth muscle proliferation and tissue repair and remodeling. Increased IL-17 and IL-22 productions have been associated with asthma. We hypothesized that PAH might affect, through their effects on AhR, IL-17 and IL-22 production in allergic asthmatics. Activated peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from 16 nonallergic nonasthmatic (NA) and 16 intermittent allergic asthmatic (AA) subjects were incubated with PAH, and IL-17 and IL-22 productions were assessed. At baseline, activated PBMCs from AA exhibited an increased IL-17/IL-22 profile compared with NA subjects. Diesel exhaust particle (DEP)-PAH and Benzo[a]Pyrene (B[a]P) stimulation further increased IL-22 but decreased IL-17A production in both groups. The PAH-induced IL-22 levels in asthmatic patients were significantly higher than in healthy subjects. Among PBMCs, PAH-induced IL-22 expression originated principally from single IL-22- but not from IL-17- expressing CD4 T cells. The Th17 transcription factors RORA and RORC were down regulated, whereas AhR target gene CYP1A1 was upregulated. IL-22 induction by DEP-PAH was mainly dependent upon AhR whereas IL-22 induction by B[a]P was dependent upon activation of PI3K and JNK. Altogether, these data suggest that DEP-PAH and B[a]P may contribute to increased IL22 production in both healthy and asthmatic subjects through mechanisms involving both AhR -dependent and -independent pathways.
Collapse
MESH Headings
- Adult
- Asthma/etiology
- Asthma/metabolism
- Benzo(a)pyrene/toxicity
- CD4-Positive T-Lymphocytes/cytology
- CD4-Positive T-Lymphocytes/metabolism
- Cells, Cultured
- Cytochrome P-450 CYP1A1/metabolism
- Down-Regulation
- Female
- Humans
- Interleukin-17/genetics
- Interleukin-17/metabolism
- Interleukins/genetics
- Interleukins/metabolism
- JNK Mitogen-Activated Protein Kinases/metabolism
- Leukocytes, Mononuclear/cytology
- Leukocytes, Mononuclear/metabolism
- Male
- Middle Aged
- Nuclear Receptor Subfamily 1, Group F, Member 1/metabolism
- Nuclear Receptor Subfamily 1, Group F, Member 3/metabolism
- Phosphatidylinositol 3-Kinases/metabolism
- Polycyclic Aromatic Hydrocarbons/toxicity
- RNA, Messenger/metabolism
- Receptors, Aryl Hydrocarbon/chemistry
- Receptors, Aryl Hydrocarbon/metabolism
- Th17 Cells/cytology
- Th17 Cells/metabolism
- Up-Regulation
- Vehicle Emissions/analysis
- Interleukin-22
Collapse
Affiliation(s)
- Coline Plé
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, U1019, F-59019, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, F-59019, Lille, France
- CNRS UMR 8204, F-59000, Lille, France
- Univ Lille Nord de France, F-59000, Lille, France
| | - Ying Fan
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, U1019, F-59019, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, F-59019, Lille, France
- CNRS UMR 8204, F-59000, Lille, France
- Univ Lille Nord de France, F-59000, Lille, France
| | - Saliha Ait Yahia
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, U1019, F-59019, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, F-59019, Lille, France
- CNRS UMR 8204, F-59000, Lille, France
- Univ Lille Nord de France, F-59000, Lille, France
| | - Han Vorng
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, U1019, F-59019, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, F-59019, Lille, France
- CNRS UMR 8204, F-59000, Lille, France
- Univ Lille Nord de France, F-59000, Lille, France
| | - Laetitia Everaere
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, U1019, F-59019, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, F-59019, Lille, France
- CNRS UMR 8204, F-59000, Lille, France
- Univ Lille Nord de France, F-59000, Lille, France
| | - Cécile Chenivesse
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, U1019, F-59019, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, F-59019, Lille, France
- CNRS UMR 8204, F-59000, Lille, France
- Univ Lille Nord de France, F-59000, Lille, France
| | - Joanne Balsamelli
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, U1019, F-59019, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, F-59019, Lille, France
- CNRS UMR 8204, F-59000, Lille, France
- Univ Lille Nord de France, F-59000, Lille, France
| | - Imane Azzaoui
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, U1019, F-59019, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, F-59019, Lille, France
- CNRS UMR 8204, F-59000, Lille, France
- Univ Lille Nord de France, F-59000, Lille, France
| | - Patricia de Nadai
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, U1019, F-59019, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, F-59019, Lille, France
- CNRS UMR 8204, F-59000, Lille, France
- Univ Lille Nord de France, F-59000, Lille, France
| | - Benoit Wallaert
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, U1019, F-59019, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, F-59019, Lille, France
- CNRS UMR 8204, F-59000, Lille, France
- Univ Lille Nord de France, F-59000, Lille, France
- Clinique des Maladies Respiratoires et Centre Hospitalier Régional et Universitaire de Lille, F-59037, Lille, France
| | - Gwendal Lazennec
- CNRS SysDiag—UMR3145 Cap delta, 1682 rue de la Valsière, F-34184, Montpellier Cedex 4, France
| | - Anne Tsicopoulos
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, U1019, F-59019, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, F-59019, Lille, France
- CNRS UMR 8204, F-59000, Lille, France
- Univ Lille Nord de France, F-59000, Lille, France
- Clinique des Maladies Respiratoires et Centre Hospitalier Régional et Universitaire de Lille, F-59037, Lille, France
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Ait Yahia S, Azzaoui I, Everaere L, Vorng H, Chenivesse C, Marquillies P, Duez C, Delacre M, Grandjean T, Balsamelli J, Fanton d'Andon M, Fan Y, Ple C, Werts C, Boneca IG, Wallaert B, Chamaillard M, Tsicopoulos A. CCL17 production by dendritic cells is required for NOD1-mediated exacerbation of allergic asthma. Am J Respir Crit Care Med 2014; 189:899-908. [PMID: 24661094 DOI: 10.1164/rccm.201310-1827oc] [Citation(s) in RCA: 24] [Impact Index Per Article: 2.4] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Indexed: 12/27/2022] Open
Abstract
RATIONALE Pattern recognition receptors are attractive targets for vaccine adjuvants, and polymorphisms of the innate receptor NOD1 have been associated with allergic asthma. OBJECTIVES To elucidate whether NOD1 agonist may favor allergic asthma in humans through activation of dendritic cells, and to evaluate the mechanisms involved using an in vivo model. METHODS NOD1-primed dendritic cells from allergic and nonallergic donors were characterized in vitro on their phenotype, cytokine secretion, and Th2 polarizing ability. The in vivo relevance was examined in experimental allergic asthma, and the mechanisms were assessed using transfer of NOD1-conditioned dendritic cells from wild-type or CCL17-deficient mice. MEASUREMENTS AND MAIN RESULTS NOD1 priming of human dendritic cells promoted a Th2 polarization profile that involved the production of CCL17 and CCL22 in nonallergic subjects but only CCL17 in allergic patients, without requiring allergen costimulation. Moreover, NOD1-primed dendritic cells from allergic donors exhibited enhanced maturation that led to abnormal CCL22 and IL-10 secretion compared with nonallergic donors. In mice, systemic NOD1 ligation exacerbated allergen-induced experimental asthma by amplifying CCL17-mediated Th2 responses in the lung. NOD1-mediated sensitization of purified murine dendritic cells enhanced production of CCL17 and CCL22, but not of thymic stromal lymphopoietin and IL-33, in vitro. Consistently, adoptive transfer of NOD1-conditioned dendritic cells exacerbated the Th2 pulmonary response in a CCL17-dependent manner in vivo. CONCLUSIONS Data from this study unveil a deleterious role of NOD1 in allergic asthma through direct induction of CCL17 by dendritic cells, arguing for a need to address vaccine formulation safety issues related to allergy.
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Affiliation(s)
- Saliha Ait Yahia
- 1 Pulmonary Immunity, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Lille, France
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Cottard A, Wagner-Ballon O, Le Priol J, Azzaoui I, Ly-Sunarram B, Fest T, Roussel M. Improvement of the leukocyte differential performed by flow cytometry using the advanced 2.0 version of the CytoDiff CXP software. Cytometry A 2014; 85:653-7. [DOI: 10.1002/cyto.a.22497] [Citation(s) in RCA: 8] [Impact Index Per Article: 0.8] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Received: 09/18/2013] [Revised: 02/12/2014] [Accepted: 05/28/2014] [Indexed: 11/10/2022]
Affiliation(s)
- Antoine Cottard
- CHU Rennes, Laboratoire d'Hématologie, Pôle de Biologie; F-35033 Rennes France
| | - Orianne Wagner-Ballon
- CHU Henri Mondor, APHP, Département d'Hématologie et d'Immunologie Biologiques; F-94000 Créteil France
- UPEC; F-94000 Créteil France
| | - Jerome Le Priol
- CHU Rennes, Laboratoire d'Hématologie, Pôle de Biologie; F-35033 Rennes France
| | - Imane Azzaoui
- CHU Rennes, Laboratoire d'Hématologie, Pôle de Biologie; F-35033 Rennes France
| | | | - Thierry Fest
- CHU Rennes, Laboratoire d'Hématologie, Pôle de Biologie; F-35033 Rennes France
- INSERM, U917; F-35043 Rennes France
| | - Mikael Roussel
- CHU Rennes, Laboratoire d'Hématologie, Pôle de Biologie; F-35033 Rennes France
- INSERM, U917; F-35043 Rennes France
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Chenivesse C, Chang Y, Azzaoui I, Ait Yahia S, Morales O, Plé C, Foussat A, Tonnel AB, Delhem N, Yssel H, Vorng H, Wallaert B, Tsicopoulos A. Pulmonary CCL18 recruits human regulatory T cells. J Immunol 2012; 189:128-37. [PMID: 22649201 DOI: 10.4049/jimmunol.1003616] [Citation(s) in RCA: 46] [Impact Index Per Article: 3.8] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Abstract] [Track Full Text] [Subscribe] [Scholar Register] [Indexed: 01/20/2023]
Abstract
CCL18 is both a constitutively expressed and an inducible chemokine, whose role in the inflammatory reaction is poorly known. The aim of this study was to evaluate whether CCL18 has the capacity to attract human T cells with a regulatory function (regulatory T cells [Treg]). Results from chemotaxis assays performed on different types of Treg showed that CD4(+)CD25(+)CD127(low) cells, but neither T regulatory type 1 clones nor Treg differentiated in vitro with anti-CD3/CD46 mAbs, were recruited by CCL18 in a dose-dependent manner. CCL18-recruited memory CD4(+) T cells were enriched in CD25(high), CD25(+)CD127(low), latency-associated peptide/TGF-β1, and CCR4-expressing T cells, whereas there was no enrichment in Foxp3(+) cells as compared with controls. Stimulated CCL18-recruited memory T cells produced significantly increased amounts of the regulatory cytokines IL-10 and TGF-β1, as well as IL-4, but not IFN-γ and IL-17. Cell surface CCL18 binding was found predominantly on IL-10(+) (26.3 ± 5.8%) and on a few latency-associated peptide/TGF-β1(+) (18.1 ± 1.9%) and IL-4(+) (14.5 ± 2.9%) memory T cells. In an in vivo model of SCID mice grafted with human skin and reconstituted with autologous PBMCs, the intradermal injection of CCL18 led to the cutaneous recruitment of CD4(+), CD25(+), and IL-10(+) cells, but not Foxp3(+) cells. Furthermore, CCL18-recruited memory T cells inhibited the proliferation of CD4(+)CD25(-) effector T cells through an IL-10-dependent mechanism. These data suggest that CCL18 may contribute to maintaining tolerance and/or suppressing deleterious inflammation by attracting memory Tregs into tissues, particularly in the lung, where it is highly and constitutively expressed.
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Affiliation(s)
- Cécile Chenivesse
- Immunité Pulmonaire, Institut de la Santé et de la Recherche Médicale Unité 1019, F-59019 Lille, France
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Ple C, Fan Y, Vorng H, Azzaoui I, Ait Yahia S, Lazennec G, Wallaert B, Tsicopoulos A. Involvement Of Polycyclic Aromatic Hydrocarbons In Th22/Th17 Polarization In Allergic Diseases. J Allergy Clin Immunol 2012. [DOI: 10.1016/j.jaci.2011.12.296] [Citation(s) in RCA: 0] [Impact Index Per Article: 0] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Indexed: 11/26/2022]
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Chang Y, Nadai PD, Azzaoui I, Morales O, Delhem N, Vorng H, Tomavo S, Yahia SA, Zhang G, Wallaert B, Chenivesse C, Tsicopoulos A. The chemokine CCL18 generates adaptive regulatory T cells from memory CD4
+
T cells of healthy but not allergic subjects. FASEB J 2010. [DOI: 10.1096/fj.10.162560] [Citation(s) in RCA: 0] [Impact Index Per Article: 0] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Indexed: 11/11/2022]
Affiliation(s)
- Ying Chang
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale Lille France
- Institut Pasteur de LilleCenter for Infection and Immunity of Lille Lille France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) Lille UMR 8204 France
- Université Lille Nord de France Lille France
| | - Patricia de Nadai
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale Lille France
- Institut Pasteur de LilleCenter for Infection and Immunity of Lille Lille France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) Lille UMR 8204 France
- Université Lille Nord de France Lille France
| | - Imane Azzaoui
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale Lille France
- Institut Pasteur de LilleCenter for Infection and Immunity of Lille Lille France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) Lille UMR 8204 France
- Université Lille Nord de France Lille France
| | - Olivier Morales
- Central Research DepartmentChina‐Japan Union Hospital Chang Chun China
| | | | - Han Vorng
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale Lille France
- Institut Pasteur de LilleCenter for Infection and Immunity of Lille Lille France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) Lille UMR 8204 France
- Université Lille Nord de France Lille France
| | - Stanislas Tomavo
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale Lille France
- Institut Pasteur de LilleCenter for Infection and Immunity of Lille Lille France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) Lille UMR 8204 France
- Université Lille Nord de France Lille France
| | - Saliha Ait Yahia
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale Lille France
- Institut Pasteur de LilleCenter for Infection and Immunity of Lille Lille France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) Lille UMR 8204 France
- Université Lille Nord de France Lille France
| | | | - Benoît Wallaert
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale Lille France
- Institut Pasteur de LilleCenter for Infection and Immunity of Lille Lille France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) Lille UMR 8204 France
- Université Lille Nord de France Lille France
- UMR 8161, CNRS, Institut de Biologie Lille France
| | - Cícile Chenivesse
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale Lille France
- Institut Pasteur de LilleCenter for Infection and Immunity of Lille Lille France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) Lille UMR 8204 France
- Université Lille Nord de France Lille France
- UMR 8161, CNRS, Institut de Biologie Lille France
| | - Anne Tsicopoulos
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale Lille France
- Institut Pasteur de LilleCenter for Infection and Immunity of Lille Lille France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) Lille UMR 8204 France
- Université Lille Nord de France Lille France
- UMR 8161, CNRS, Institut de Biologie Lille France
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Chang Y, de Nadai P, Azzaoui I, Morales O, Delhem N, Vorng H, Tomavo S, Ait Yahia S, Zhang G, Wallaert B, Chenivesse C, Tsicopoulos A. The chemokine CCL18 generates adaptive regulatory T cells from memory CD4+ T cells of healthy but not allergic subjects. FASEB J 2010; 24:5063-72. [DOI: 10.1096/fj.10-162560] [Citation(s) in RCA: 31] [Impact Index Per Article: 2.2] [Reference Citation Analysis] [What about the content of this article? (0)] [Affiliation(s)] [Track Full Text] [Journal Information] [Subscribe] [Scholar Register] [Indexed: 11/11/2022]
Affiliation(s)
- Ying Chang
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, Lille, France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) UMR 8204, Lille, France
- Université Lille Nord de France, Lille, France
| | - Patricia de Nadai
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, Lille, France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) UMR 8204, Lille, France
- Université Lille Nord de France, Lille, France
| | - Imane Azzaoui
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, Lille, France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) UMR 8204, Lille, France
- Université Lille Nord de France, Lille, France
| | | | - Nadira Delhem
- Central Research Department, China-Japan Union Hospital, Chang Chun, China
| | - Han Vorng
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, Lille, France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) UMR 8204, Lille, France
- Université Lille Nord de France, Lille, France
| | - Stanislas Tomavo
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, Lille, France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) UMR 8204, Lille, France
- Université Lille Nord de France, Lille, France
| | - Saliha Ait Yahia
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, Lille, France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) UMR 8204, Lille, France
- Université Lille Nord de France, Lille, France
| | - Guizhen Zhang
- Central Research Department, China-Japan Union Hospital, Chang Chun, China
| | - Benoît Wallaert
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, Lille, France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) UMR 8204, Lille, France
- Université Lille Nord de France, Lille, France
- Clinique des Maladies Respiratoires et Centre Hospitalier Régional et Universitaire de Lille, Lille, France
| | - Cécile Chenivesse
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, Lille, France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) UMR 8204, Lille, France
- Université Lille Nord de France, Lille, France
- Clinique des Maladies Respiratoires et Centre Hospitalier Régional et Universitaire de Lille, Lille, France
| | - Anne Tsicopoulos
- Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Lille, France
- Institut Pasteur de Lille, Center for Infection and Immunity of Lille, Lille, France
- Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) UMR 8204, Lille, France
- Université Lille Nord de France, Lille, France
- Clinique des Maladies Respiratoires et Centre Hospitalier Régional et Universitaire de Lille, Lille, France
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